Из Википедии, бесплатной энциклопедии
Перейти к навигации Перейти к поиску

Жидкостная силовая микроскопия ( FluidFM ) - это тип сканирующей зондовой микроскопии , которая обычно используется в стандартном инвертированном оптическом микроскопе .

Уникальной особенностью FluidFM является то, что он вводит микроскопические каналы в зонды АСМ . Эти каналы могут иметь апертуру менее 300 нм или в 500 раз тоньше человеческого волоса . Эти нанометрические характеристики позволяют обрабатывать объемы жидкости в фемтолитровом (fL) масштабе, а также манипулировать субмикронными объектами с управляемым усилием. Через наножидкостные каналы вещества можно, например, вводить в отдельные клетки или клетки можно изолировать от конфлюэнтного слоя.

Технология [ править ]

В качестве зондов FluidFM используются специальные микропипетки и нанопипетки с отверстиями от 300 нм до 8 мкм. Больший диаметр полезен для экспериментов по адгезии отдельных клеток, тогда как меньший диаметр предоставляет хорошие возможности для нанолитографии и обработки субмикронных объектов. По сравнению с традиционными стеклянными микропипетками зонды FluidFM гораздо более бережны для мягких образцов, таких как клетки. Им можно управлять с точностью pN и нм, а также обрабатывать объемы более точно и согласованно благодаря процессу изготовления на основе пластин. FluidFM имеет уникальные преимущества для приложений с одной ячейкой и не только.

Для управления объемами в диапазоне fL FluidFM полагается на контроль давления. В зависимости от области применения используется либо избыточное давление, либо вакуум. Типичное рабочее давление находится в диапазоне нескольких гПа .

Технология FluidFM обычно используется поверх инвертированного микроскопа. В дополнение к стандартным экспериментам АСМ , FluidFM предоставляет возможность выполнять бесчисленное множество других приложений, таких как инъекция отдельных клеток и адгезия, а также нанолитография и споттинг.

Приложения [ править ]

Инъекции единичных клеток - важный инструмент для наук о жизни, биологии и медицины. Для проведения экспериментов по инъекции отдельной клетки зонд протыкает клетку, и может быть введено вещество. С FluidFM вероятность успеха составляет почти 100%, в отличие от других методов, потому что зонды маленькие, острые и чувствительны к усилию. [1] [2]

Отдельную клетку можно выделить либо из прилипшей, даже конфлюэнтной клеточной культуры, либо из клеточной суспензии. Затем выделенная клетка может быть проанализирована общепринятыми одноклеточными методами или может быть использована для выращивания новой колонии. FluidFM использовался для выделения клеток млекопитающих , дрожжей и бактерий . [3] [4] [5]

Измеряя адгезию отдельных клеток, можно получить важную информацию по различным темам биологии и материаловедения. С FluidFM можно увеличить скорость проведения этих экспериментов и даже оценить адгезию разросшихся клеток. Исследуемая ячейка обратимо прикрепляется к зонду за счет создания разрежения. Поднимая зонд, можно измерить силу адгезии с разрешением pN. [6] [7] [8]

Метод проведения эксперимента по адгезии отдельных бактерий такой же, как и для отдельных клеток. Он предоставляет информацию о том, как бактериальные клетки взаимодействуют со своей поверхностью и друг с другом. [9]

Коллоидные эксперименты дают возможность измерить силы взаимодействия между коллоидными частицами и поверхностями, а также локальную эластичность сложных субстратов. Скорость, с которой могут быть выполнены эти эксперименты, довольно низкая, потому что обычно коллоиды должны быть предварительно наклеены на зонд AFM. Напротив, коллоидные зонды могут быть обратимо прикреплены к зонду FluidFM за счет пониженного давления. Следовательно, один зонд можно использовать для множества экспериментов и множества коллоидов. [8] [10]

Нанолитография - это процесс травления, письма или печати структур в диапазоне нанометров. Небольшое количество жидкости можно дозировать через наконечник зонда. С FluidFM дозируемые объемы от менее фл. До многих мкл. FluidFM работает как в воздухе, так и в жидкости. [11] [12]

Пятна - это процесс печати пятен и массивов высокой плотности в диапазоне от нанометра до одного микрометра. Можно напечатать практически любую жидкость. Печатные частицы могут быть, например, олигонуклеотидами, белками, ДНК, вирионами или бактериальными клонами. Пятна образуются, когда нанопипетка соприкасается с поверхностью, и вещество выходит из зонда с помощью короткого импульса давления. [12] [13]

Ссылки [ править ]

  1. ^ 2013. O. Guillaume - Gentil, E. Potthoff, D. Ossola, P. Dörig, T. Zambelli и JA Vorholt. Инъекция жидкости с контролируемой силой в ядра отдельных клеток. Малый, 9 (11), 1904 - 1907 гг. Doi : 10.1002 / smll.201202276
  2. ^ 2009. А. Мейстер, М. Габи, П. Бер, П. Штудер, Й. Вёрёш, П. Нидерманн, Дж. Биттерли, Дж. Полесель-Марис, М. Лили, Х. Хайнцельманн и Т. Замбелли. FluidFM: сочетание атомно-силовой микроскопии и наножидкостей в универсальной системе доставки жидкости для одноклеточных и других приложений. Нано-буквы, 9 (6), 2501 - 2507. doi : 10.1021 / nl901384x
  3. ^ 2014 О. Гийом-Жантиль, Т. Замбелли & JA Vorholt. Выделение отдельных клеток млекопитающих из прилипших культур методом жидкостной силовой микроскопии. Лаборатория на чипе, 14 (2), 402–14. DOI : 10.1039 / c3lc51174j
  4. ^ 2010. П. Дериг, П. Штифель, П. Бер, Э. Сараджлик, Д. Бейл, М. Габи, Й. Вёрёш, Дж. А. Ворхольт и Т. Замбелли. Пространственное манипулирование с контролем силы жизнеспособных клеток и микроорганизмов млекопитающих с помощью технологии FluidFM. Письма по прикладной физике, 97 (2), 023701 1–3. DOI : 10,1063 / 1,3462979
  5. ^ 2013. П. Штифель, Т. Замбелли и Дж. А. Ворхольт. Выделение отдельных бактерий с оптическим прицелом путем применения жидкостной силовой микроскопии к аэробным аноксигенным фототрофам из филлосферы. Прикладная и экологическая микробиология, 79 (16), 4895–4905. DOI : 10,1128 / AEM.01087-13
  6. ^ 2014. Э. Поттхофф, Д. Франко, В. Д'Алессандро, К. Старк, В. Фальк, Т. Замбелли, Дж. А. Ворхольт, Д. Пуликакос и А. Феррари. К рациональному дизайну текстуры поверхности, способствующей эндотелиализации. Nano Letters, 14 (2), 1069 - 1079. DOI : 10.1021 / nl4047398
  7. ^ 2012. Э. Поттхофф, О. Гийом - Джентиль, Д. Оссола, Дж. Полесель - Марис, С. Лейбунд Гут - Ландманн, Т. Замбелли и Дж. А. Ворхольт. Быстрая и последовательная количественная оценка сил адгезии клеток дрожжей и млекопитающих. PLoS ONE, 7 (12), e52712. DOI : 10.1371 / journal.pone.0052712
  8. ^ Б 2013 г. П. Dörig, Д. Оссолы, А. М. Труонга, М. Граф, Ф. Стауффер, Дж & Вёрёш Т. Замбелли. Сменные коллоидные АСМ-зонды для количественной оценки необратимых и долговременных взаимодействий. Биофизический журнал, 105 (2), 463 - 472. DOI : 10.1016 / j.bpj.2013.06.002
  9. ^ 2015. Э. Поттхофф, Д. Оссола, Т. Замбелли и Дж. А. Ворхольт. Количественная оценка силы бактериальной адгезии с помощью жидкостной силовой микроскопии. (2015) Nanoscale, 7 (9), 4070-4079. doi : 10.1039 / c4nr06495j
  10. ^ 2015. Б. Р. Симона, Л. Хирт, Л. Демко, Т. Замбелли, Й. Вёрёш, М. Эрбар и В. Миллерет. Градиенты плотности на границах раздела гидрогеля для улучшенного проникновения в клетки. Биоматер. Sci. DOI : 10.1039 / C4BM00416G
  11. ^ 2013. Р. Р. Грютер, Дж & Вёрёш Т. Замбелли. FluidFM как инструмент литографии в жидкости: пространственно контролируемое осаждение флуоресцентных наночастиц. Наномасштаб, 5 (3), 1097 - 104. doi : 10.1039 / c2nr33214k
  12. ^ Б 2014. Х. Dermutz, Р. Р. Грютер, А. М. Труонга, Л. DEMKO, Дж & Вёрёш Т. Замбелли. Локальная замена полимера для формирования паттерна нейронов и управления нейритами in situ. Ленгмюр: журнал ACS поверхностей и коллоидов, 30 (23), 7037 - 46. doi : 10.1021 / la5012692
  13. ^ 2009. А. Мейстер, Й. Полесель - Марис, П. Нидерманн, Я. Пшибильска, П. Штудер, М. Габи, П. Бер, Т. Замбелли, М. Лили, Й. Вёрёш и Х. Хайнцельманн. Наноразмерное дозирование в жидкой среде стрептавидина на функционализированную биотином поверхность с использованием полых зондов для атомно-силовой микроскопии. Микроэлектронные Engineering, 86 (4-6), 1481 - 1484. DOI : 10.1016 / j.mee.2008.10.025