Из Википедии, свободной энциклопедии
Перейти к навигации Перейти к поиску

Thielaviopsis basicola
Thielaviopsis basicola 1.JPG
Микроскопический вид хламидоспор Thielaviopsis (черный) и эндоконидий (гиалиновый)
Научная классификация редактировать
Царство:Грибы
Разделение:Аскомикота
Класс:Сордариомицеты
Приказ:Микроуровни
Семья:Ceratocystidaceae
Род:Тиэлавиопсис
Разновидность:
T. basicola
Биномиальное имя
Thielaviopsis basicola
(Берк и Брум) Феррари (1912)
Синонимы

Chalara elegans Nag Raj & WB Kendr. (1975)
Torula basicola Berk. & Broome (1850)
Trichocladium basicola (Berk. & Broome) JW Carmich. (1980)

Theliaviopsis basicola - это грибковые патогены растений, вызывающие заболевание черной корневой гнилью. Эта конкретная болезнь имеет широкий спектр хозяев, поражая древесные декоративные растения, травянистые декоративные растения, агрономические культуры и даже овощные культуры. [1] Примеры восприимчивых хозяев включают петунию, анютины глазки, пуансеттию, табак, хлопок, морковь, салат, помидоры и другие. [2] [3] [4] [1] Симптомы этого заболевания напоминают дефицит питательных веществ [5], но на самом деле являются результатом разложения корневой системы растений. [1] Общие симптомы включают хлоротик нижней части листвы, пожелтение растений, задержку роста или увядание, а также черные поражения вдоль корней. [2] [4] [6]Поражения вдоль корней могут сначала казаться красными, а по мере прогрессирования болезни темнеть и становиться черными. [3] Поражения черного корня, которые начинаются в середине корня, также могут распространяться дальше вдоль корня в любом направлении. Из-за природы возбудителя болезнь легко определить по черным очагам вдоль корней, особенно если сравнивать со здоровыми корнями. [5] Черные поражения, которые появляются вдоль корней, являются результатом образования хламидоспор, покоящихся спор грибов, которые способствуют его патогенности. Хламидоспоры имеют темно-коричнево-черный цвет и вызывают «обесцвечивание» корней, когда производятся в больших количествах. [7]

Черная корневая гниль .

Окружающая среда [ править ]

Как плохой сапрофит и облигатный паразит [4] T. basicola часто зависит от благоприятных условий окружающей среды. Хотя патоген может расти в различных условиях влажности почвы, влажная почва является оптимальной для более сильного заражения, поскольку споры могут легко перемещаться в воде. [1] Вода играет роль в распространении спор и может привести к повышению уровня инфицирования. Температуру почвы также играют важную роль, поскольку температура в пределах 55-65 ℉ благоприятна для патогена. Однако температура выше 86 ℉ неблагоприятна для грибов и обнаруживаются только следы возбудителя. [7] При более низких температурах тяжесть заболевания увеличивается, поскольку температуры становятся неблагоприятными для хозяев и вызывают стресс у них.[2] Щелочные глинистые почвы способствуют развитию патогенности, а также благоприятствуют развитию патогенов. [8] Это можно объяснить тем фактом, что патоген подавляется в почвах с pH менее 5,2, поэтому увеличение pH благоприятно для серьезности заболевания. Есть также культурные условиякоторые могут вызвать стресс на растенияххозяевахкоторые способствуют патогенуто числе высоких растворимых солей, чрезмерные азотных удобрений, низким уровень органического вещества и т.д. [1] Когда растение подвергается стрессу изза культурные условия, есть увеличение восприимчивость к условно-патогенным микроорганизмам, таким как T. basicola . [7] По этой причине важно соблюдать надлежащие условия культивирования, такие как поддержание надлежащей температуры, количества азотных удобрений и pH почвы, чтобы уменьшить стресс растений-хозяев и снизить восприимчивость к болезням.

Патогенез [ править ]

Thielaviopsis basicola - это почвенный гриб, который принадлежит к разделу « настоящих грибов » Ascomycota и является гемибиотрофным паразитом. [9] Грибы, принадлежащие к Ascomycota, как известно, производят бесполые и половые споры, однако половая стадия еще не наблюдалась и не подтверждена в жизненном цикле Thielaviopsis basicola , который классифицирует этот вид как дейтеромицет или несовершенный гриб. [10] Во время бесполого репродуктивного цикла Thielaviopsis basicola из гиф переносятся два типа бесполых спор, включая эндоконидии и хламидоспоры. [10]Эндоконидии представляют собой особый тип конидий, поскольку они развиваются в полой полости внутри гифальной трубки и выбрасываются из конца этой трубки для рассеивания. [11] Обе вышеупомянутые споры должны сначала подвергнуться физическому распространению, чтобы начать обнаружение инфекционного суда на новом жизнеспособном хозяине. Помимо нормального перемещения спор в почвенной среде, наблюдались переносчики, такие как береговые мухи, несущие и передающие по воздуху споры Thielaviopsis basicola , что нехарактерно для грибковых патогенов, переносимых через почву. [12] При приземлении на зараженное растение береговые мухи питаются инфицированной тканью и глотают споры вместе с растительным материалом, но только для того, чтобы выделять споры автостопщика в своей массе., который в конечном итоге попадает в здоровую ткань растения, продолжая цикл болезни. [12] Однако важно отметить, что эта связь между переносчиками и почвенными грибами наблюдалась только в коммерческих сельскохозяйственных условиях, в которых искусственно контролируемая среда (например, теплицы) способствуют созданию условий, которые отличаются от естественного мира. [12]

После распространения (с помощью насекомых-переносчиков, культивирования или других средств перемещения в почвенной матрице) споры обнаруживают место инфекции на растении-хозяине (обычно корневые волоски) и прорастают в ответ на стимулы, производимые корневыми экссудатами. некоторые из них включают сахара, лецитины и ненасыщенные триглицериды. [13] Зародышевые трубочки выходят из спор и напрямую проникают в клетки корневых волосков (обычно одноклеточный эпидермальный слой) через гифы проникновения. [13] Живое растение-хозяин обычно отвечает развитием клеточных аппозиций, называемых сосочками, которые пытаются блокировать проникновение патогена через клеточную стенку и последующее паразитирование клеток-хозяев. [14]Однако большинство этих ранних защитных механизмов оказываются безуспешными, отсюда важность и распространенность болезни во всем мире. Продвигаясь вперед, вегетативные клетки гиф дифференцируются в питающие структуры, похожие на гаустории, которые биотрофно поглощают питательные вещества из клеток-хозяев. [15] После того, как патоген пробил клеточную стенку клетки эпидермального корня, он начинает высвобождать эффекторные соединения, которые нарушают системные защитные механизмы хозяина. [16] Системная приобретенная устойчивость (SAR) используется хозяином для активного устранения локализованной инфекции и запуска защитных сигнальных каскадов по всему растению. Например, SAR NPR1 (At NPR1) ген имеет особое значение и действует для подавления инфекционных способностей Thielaviopsis basicola , эффективно придавая устойчивость некоторым растениям-хозяевам. [16] Кроме того, исследования показывают, что ген NPR1 , когда он сверхэкспрессируется в трансгенных растениях, способствует экспрессии других генов, связанных с защитой, таких как PR1 , эффективно повышая устойчивость к инфекции Thielaviopsis basicola. [16] NPR1 и связанные с ним преимущества для повышения устойчивости к болезням были признаны возможными инструментами для использования при оснащении экономически необходимых культур трансгенной устойчивостью к болезням. [16]

После успешного проникновения и создания биотрофных питающих структур патоген проникает в ткань корня, оставляя на своем пути характерные черные / коричневые поражения (окраска поражений может быть отнесена к скоплениям толстостенных хламидоспор); он продолжает размножаться, пока в конечном итоге не перейдет в некротрофическую стадию. [10] Гемибиотрофы, такие как Thielaviopsis basicola, переходят от биотрофной стадии к некротрофной в результате скоординированных усилий между различными генами патогенеза, которые секретируют эффекторные белки, способные манипулировать защитной системой своего хозяина. [17] Исследования показывают, что во время биотрофии определенные типы эффекторов патогена экспрессируются по сравнению с другими, и наоборот во время некротрофической стадии.[17] Как только патоген перестанет отдавать предпочтение биотрофной стадии, он инициирует этот сложный генетический переход и перейдет к некротрофной стадии. Чтобы переваривать и метаболизировать питательные вещества из некротизированного растения-хозяина, Thielaviopsis basicola выделяет ферменты, такие как ксиланаза и другие гемицеллюлазы, которые разрушают клеточные ткани, делая их доступными для грибов. [18] На этой стадии патоген также производит свои бесполые споры в очагах поражения для размножения и распространения большего количества пропагул для продолжения выживания в почве. [10] Помимо обычного процесса инфицирования, исследования показали, что Thielaviopsis basicolaи его патогенез синергетически связан со случайным процессом коинфекции с участием нематод Meloidogyne incognita, когда они присутствуют в одной и той же почве. [19] Было замечено, что заражение тканей хозяина Meloidogyne incognita способствует инфицированию Thielaviopsis basicola в тканях корня и сосудов, эффективно позволяя грибковому патогену оптимизировать инфекцию даже при неоптимальных условиях окружающей среды. [19]

Важность [ править ]

Thielaviopsis basicola был обнаружен в середине 1800-х годов и остается важным патогеном, поражающим декоративные и сельскохозяйственные растения в более чем 31 стране мира. [10] Патоген, как известно, задерживает или задерживает созревание у видов, на которых он паразитирует, что в сочетании с экологическими ограничениями может привести к серьезным экономическим потерям. [20] Было замечено, что черная корневая гниль может задержать созревание растений на срок до месяца и привести к снижению урожайности пораженных культур более чем на 40%. [20] Одна культура, пораженная Thielaviopsis basicola.и что имеет важное экономическое значение - хлопок. Только в Соединенных Штатах в период с 1995 по 2005 год общая годовая потеря доходов из-за болезней урожая хлопка составила 897 миллионов долларов. [21] Thielaviopsis basicola внесла значительный вклад в эти экономические потери. В других частях света, например, в Австралии, крупнейшем производителе хлопка, Thielaviopsis basicola также оказывает очень серьезное экономическое воздействие. В Австралии болезнь впервые наблюдалась у душистого горошка в 1930-х годах. [13]Однако черная корневая гниль распространилась на ряд культурных растений-хозяев, особенно на производство хлопка в Австралии. Фактически, исследования статистики сельского хозяйства Австралии, проведенные в 2010 и 2011 годах, показали, что черная корневая гниль присутствует в 93% ферм и 83% изученных полей. [13] На пораженных полях потери урожая достигли 1,5 тюка с акра. [13] В среднем по стране производство хлопка на гектар в Австралии составляет около 10 тюков, поэтому потеря 1,5 тюка на акр (или примерно 3 тюка на гектар) из-за черной корневой гнили приводит к значительным потерям. [22] Помимо хлопка, черной корневой гнилью страдают не только хлопок, но и морковь, люпин, капуста, клевер и табак, выращиваемые во многих странах. [23]Некоторые важные декоративные культуры, пораженные черной корневой гнилью, включают: бегонию, пуансеттию, африканскую ромашку, анютины глазки, календулы и петунию; список довольно обширный. [24] Однако культурные обычаи привели к искоренению этого заболевания у многих декоративных культур, включая пуансеттию. В 1950-х и 1960-х годах производство пуансеттии было разрушено черной корневой гнилью. [25] Несмотря на то, что почвенные смеси были заменены на беспочвенные альтернативы во всем цветоводстве, черная корневая гниль больше не представляла угрозы для пуансеттии. [25] Thielaviopsis basicola (черная корневая гниль) была и останется серьезной угрозой для сельскохозяйственных культур, выращиваемых во всем мире как в сельскохозяйственных, так и в садоводческих системах.

Цикл болезни [ править ]

Thielaviopsis basicola - болезнь, обитающая в почве. Патоген обычно колонизирует корневую ткань в первые две-восемь недель роста урожая. Это вызывает гибель корковых клеток, в результате чего корни становятся коричневыми или почерневшими. Гибель клеток корня также снижает образование новых тканей как в корнях, так и в побегах. После успешного заражения грибок начинает вегетативно расти через гифы и производит два типа спор. [26] В данной конкретной ситуации состояние означает несовершенную форму грибов. В состоянии «чалара» образуются эндоспоры (конидии), а в Thielavopsis образуются алевриоспоры (хламидоспоры). Хламидоспоры выживают в почве много лет ». [27]На влажной и прохладной почве споры прорастут. Это наиболее «тяжело» при температуре от 55 ° до 61 ° F, в то время как при 86 ° F развивается лишь след болезни. Щелочная почва способствует развитию болезни, которую можно предотвратить при pH 4,8 и значительно снизить при pH 5,5 или ниже ». [26] Грибок может «распространяться через переносчиков, включая грибных комаров и прибрежных мух, от инфицированных корней к здоровым корням, если они вступают в контакт друг с другом и когда споры (конидии) разбрызгиваются из горшка в горшок при поливе». [28]

Управление [ править ]

Культурные обычаи и механические меры [ править ]

Первоочередной и главной стратегией борьбы с T. basicola при первых признаках заболевания должен быть культурный контроль, включающий - «поддержание pH почвы ниже 5,6, удаление и уничтожение всех больных растений, использование беспочвенных сред, стерилизацию оборудования, поддержание чистоты на рабочих местах. и борьба с грибными мошками и мухами. Переносчиками инфекции могут быть грибные мошки и прибрежные мухи; поэтому борьба с этими вредителями может привести к минимизации распространения грибка ». [27] Кроме того, «для борьбы с черной корневой гнилью рекомендуется севооборот. Почвенные фумиганты, такие как хлорпикрин, могут быть полезны для контроля за семенным ложем и ингибиторами стеринов ». [29]Кроме того, «во избежание заражения растений и почвенных сред, полы теплиц и проходы следует слегка опрыскивать водой, чтобы снизить перенос пыли T. basicola по воздуху во время операций по уборке». [30] В конце вегетационного периода «тщательная очистка теплицы может быть полезной, потому что она снижает вероятность выживания гриба в качестве устойчивых хламидоспор на почвенном дне и в деревянных скамейках» [28].

Устойчивость к болезням [ править ]

Устойчивость к болезням может быть естественным образом закодирована в геноме самого хозяина и индуцирована естественными или искусственными способами, искусственно введена с помощью ряда трансгенных или селекционных мер и / или взаимно связана с полезными микробами, обнаруженными в почвенных экосистемах. Большинство, если не все, сосудистые растения используют систему защиты, которая состоит из иммунитета, запускаемого PAMP (PTI), и иммунитета, запускаемого эффектором (ETI). [31]После локализованной инфекции и притока ассоциированных стимуляторов патогенов вышеупомянутые реакции иммунной системы запускают системную приобретенную резистентность (SAR), которая запускает каскад защитных сигналов по всему растению, чтобы инициировать стратегии защиты в отдаленных местах, нацеленных на атаки любых распознанных чужеродных патогенов. Однако даже с этими врожденными линиями защиты часто преобладает возбудитель. Это требует селективного разведения, генетических манипуляций или других новых методов биологического контроля. Оценка разновидностей / культурных сортов на устойчивость к болезням и селекция на отдельные признаки устойчивости являются важным методом управления, используемым производителями и селекционерами в борьбе с Thielaviopsis basicola . [32]Коммерчески доступные устойчивые виды растений включают избранные сорта падуба японского (среди других видов падуба) и древесные растения, такие как самшит и барбарис. [32] [33] Однако для некоторых важных культур, таких как хлопок, не было выведено ни одного коммерчески жизнеспособного сорта, обладающего достаточной устойчивостью к черной корневой гнили. [13] Интересно, что в Австралии исследователи определили диплоидные виды хлопчатника, демонстрирующие заметную устойчивость к черной корневой гнили, однако скрещивание этих признаков с жизнеспособными товарными культурами оказалось затруднительным. [13] Точно так же исследователи из Польши обнаружили врожденную устойчивость к болезням в зародышевой плазме дикого родственника Nicotiana tabacum, называемогоNicotiana glauca . [23] Более того, гены устойчивости к болезням, полученные от Nicotiana debneyi (родственника ранее упомянутых видов табака), были успешно включены в сорта табака, демонстрирующие устойчивость к нескольким расам Thielaviopsis basicola. [23] При этом селекционная селекция - не единственный источник устойчивости к черной корневой гнили при современной патологии растений. Трансгенные методы борьбы с болезнями открывают новые многообещающие возможности для ученых, чтобы помочь в адаптации растений ко все более опасным патогенам. Один из таких механизмов включает манипулирование экспрессией гена NPR1 в последовательностях защитного генома растения-хозяина. [31]Путем сверхэкспрессии генов NPR1 трансгенно в растениях-хозяевах, таких как хлопок, ученые смогли увеличить индукцию генов PR, таких как PR1 и LIPOXYGENASE1 , что привело к повышенной устойчивости за счет повышения урожайности и ограничения задержки роста. [31]В дополнение к генетическим инструментам, патологи-изобретатели изучают другие новые методы контроля, которые включают, среди прочего, полезные микробы и агенты биологической борьбы (BCA). Симбиотические ассоциации между арбускулярными микоризными грибами и корнями растений хорошо задокументированы, но ученые, изучающие защиту растений-хозяев, обнаружили, что эта связь может быть более загадочной, чем считалось ранее. Некоторые исследователи предполагают, что эта ассоциация распространяется на сферу устойчивости и защиты от болезней. [34] Этот феномен был проанализирован в исследовании, проведенном немецкими учеными, которые изучали экспрессию транскриптов генов, связанных с защитой, у Petunia hybrida, когда они подвергались воздействию Thielaviopsis basicola.а также колонизированы сетями арбускулярных микоризных грибов в их ризосфере. [34] Они обнаружили, что симбиоз арбускулярной микоризы (AM) функционировал как первая линия защиты, противодействуя патогенным грибам, прежде чем он мог когда-либо вызвать защитную реакцию у самого хозяина. [34] Таким образом, не исключено, что меры контроля, включающие биотические добавки, такие как AM, могут быть использованы в будущем для контроля наличия болезней на сельскохозяйственных полях без использования вредных химикатов и / или генетического вмешательства.

Зараженные растения [ править ]

Видеть:

  • Список болезней люцерны
  • Список болезней африканских ромашек
  • Список болезней моркови
  • Список болезней нута
  • Список болезней цинерарии
  • Список болезней цитрусовых
  • Список болезней хлопчатника
  • Список болезней тыквенных
  • Список болезней цикламена
  • Список болезней льна
  • Список болезней фуксии
  • Список болезней герани
  • Список болезней чечевицы
  • Список болезней гороха
  • Список болезней арахиса
  • Список болезней пуансеттии
  • Список болезней клевера лугового
  • Список болезней сои
  • Список табачных болезней
  • Список болезней томата
  • Список болезней вербены

Ссылки [ править ]

  1. ^ a b c d e Морои, К .; Сато, Т. (1975-08-15). «Сравнение метаболизма прокаина и изокарбоксазида in vitro с помощью микросомальной амидазы-эстеразы печени» . Биохимическая фармакология . 24 (16): 1517–1521. DOI : 10.1016 / 0006-2952 (75) 90029-5 . ISSN  1873-2968 . PMID  8 .
  2. ^ a b c Макар, AB; McMartin, KE; Palese, M .; Tephly, TR (июнь 1975 г.). «Формиат проба в жидкостях организма: применение при отравлении метанолом» . Биохимическая медицина . 13 (2): 117–126. DOI : 10.1016 / 0006-2944 (75) 90147-7 . ISSN 0006-2944 . PMID 1 .  
  3. ^ а б Смит, RJ; Брайант, Р.Г. (1975-10-27). "Замещения металлов в карбоновой ангидразе: исследование зонда галогенид-иона" . Сообщения о биохимических и биофизических исследованиях . 66 (4): 1281–1286. DOI : 10.1016 / 0006-291x (75) 90498-2 . ISSN 0006-291X . PMID 3 .  
  4. ^ a b c Coumans, JVF; Харви, Дж .; Backhouse, D .; Поляк, А .; Рафтери, MJ; Nehl, D .; Кац, Мэн; Перег, Л. (март 2011 г.). «Протеомная оценка связанной с хозяином микроэволюции у гриба Thielaviopsis basicola: австралийское разнообразие Thielaviopsis basicola» . Экологическая микробиология . 13 (3): 576–588. DOI : 10.1111 / j.1462-2920.2010.02358.x . PMID 20977570 . 
  5. ^ а б Шмольдт, А .; Benthe, HF; Хаберланд, Г. (1975-09-01). «Метаболизм дигитоксина микросомами печени крысы» . Биохимическая фармакология . 24 (17): 1639–1641. ISSN 1873-2968 . PMID 10 .  
  6. ^ Bose, KS; Сарма, Р.Х. (1975-10-27). «Определение интимных деталей конформации остова пиридиннуклеотидных коферментов в водном растворе» . Сообщения о биохимических и биофизических исследованиях . 66 (4): 1173–1179. DOI : 10.1016 / 0006-291x (75) 90482-9 . ISSN 1090-2104 . PMID 2 .  
  7. ^ a b c "Профиль корневого заболевания: Тиелавиопсис" . www.pthorticulture.com . Проверено 8 декабря 2020 .
  8. ^ Чоу, YW; Pietranico, R .; Мукерджи, А. (1975-10-27). «Исследования энергии связи кислорода с молекулой гемоглобина» . Сообщения о биохимических и биофизических исследованиях . 66 (4): 1424–1431. DOI : 10.1016 / 0006-291x (75) 90518-5 . ISSN 0006-291X . PMID 6 .  
  9. ^ Coumans, Joëlle VF, Moens, Pierre DJ, Polijak, Anne, Al-Jaaidi, Samiya, Pereg, Lily and Raferty, Mark J. 2010. Изменения протеома почвенного патогенного гриба Thielaviopsis basicola, вызванные экстрактом растений. . Протеомика 10: 1573-1591. DOI: https://doi.org/10.1002/pmic.200900301
  10. ^ a b c d e Nel, WJ, Duong, TA, de Beer, ZW и Wingfield, MJ 2019. Черная корневая гниль: давно известная, но малоизученная болезнь. Патология растений. DOI : 10.1111 / ppa.13011
  11. ^ Дельвеккио В.Г., Корбаз Р. и Туриан Г. 1969. Ультраструктурное исследование гиф, эндоконидий и хламидоспор Thielaviopsis basicola. Журнал общей микробиологии 58: 23-27. DOI : 10.1099 / 00221287-58-1-23
  12. ^ a b c Стангеллини, М.Е., Расмуссен, С.Л., и Ким, Д.Х. 1999. Воздушная передача Thielaviopsis basicola, возбудителя кукурузного салата, взрослыми прибрежными мухами. Фитопатология 89: 476-479. DOI: https://doi.org/10.1094/PHYTO.1999.89.6.476
  13. ^ a b c d e f g Перег, Лили Л. 2013. Черная корневая гниль хлопка в Австралии: хозяин, патоген и борьба с болезнями. Науки о растениеводстве и пастбищах 64: 1112-1126. DOI: https://doi.org/10.1071/CP13231
  14. ^ Мимс, Чарльз В., Копс, Уоррен Э. и Ричардсон, Элизабет А. 2000. Ультраструктура проникновения и заражения корней анютиных глазок Thielaviopsis basicola. Фитопатология 90: 843-850. DOI: https://doi.org/10.1094/PHYTO.2000.90.8.843
  15. ^ Худ, М. Е. и Шью, HD 1997. Переоценка роли сапрофитной активности в экологии Thielaviopsis basicola. Фитопатология 87: 1214-1219. DOI: https://doi.org/10.1094/PHYTO.1997.87.12.1214
  16. ^ a b c d Кумар, Винод, Джоши, Самир Г., Белл, Алоис А. и Ратор, Кеерти С. 2012. Повышенная устойчивость к Thielaviopsis basicola у трансгенных растений хлопка, экспрессирующих ген NPR1 Arabidopsis. Трансгенные исследования 22: 359-368. DOI : 10.1007 / s11248-012-9652-9
  17. ^ a b Ли, SJ, и Роуз, JK 2010. Посредничество перехода от биотрофии к некротрофии у гемибиотрофных патогенов растений секретируемыми эффекторными белками. Сигнализация и поведение растений 5 (6): 769-772. https://doi.org/10/4161/psb.5.6.11778
  18. ^ Гош, В.К. и Деб, Дж. К. 1988. Производство и характеристика ксиланазы из Thielaviopsis basicola. Прикладная микробиология и биотехнология 29: 44-47. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00258349
  19. ^ a b Уокер, Н.Р., Киркпатрик, Т.Л. и Ротрок, С.С. 1999. Влияние температуры на и гистопатологию взаимодействия между Meloidogyne incognita и Thielaviopsis basicola на хлопке. Фитопатология 89: 613-617. DOI: https://doi.org/10.1094/PHYTO.1999.89.8.613
  20. ^ а б Холмен, Шарна. 2016. Черная корневая гниль: обзор исследований. https://www.cottoninfo.com.au/sites/default/files/documents/BRR%20update%20%28long%29%20v2%20-%20Oct%202016.pdf
  21. ^ Ню, Чен, Листер, Харриет Э., Нгуен, Бэй, Уиллер, Терри А. и Райт, Роберт Дж. 2008. Устойчивость к Thielaviopsis basicola в культивируемом геноме хлопка А. Теоретическая и прикладная генетика 117: 1313-1323. DOI : 10.1007 / s00122-008-0865-5
  22. ^ Фаррелл, Роджер. 2018. Австралия: Хлопок и продукты ежегодно. Министерство сельского хозяйства США за рубежом: Глобальная сеть сельскохозяйственной информации. https://apps.fas.usda.gov/newgainapi/api/report/downloadreportbyfilename?filename=Cotton%20and%20Products%20Annual_Canberra_Australia_3-28-2018.pdf
  23. ^ a b c Трояк-Голуч, Анна и Бербек, Аполониуш. 2005. Возможности Nicotiana glauca (Grah.) Как источника устойчивости к черной корневой гнили Thielaviopsis basicola (Ber. And Broome) Ferr. в улучшении табака. Селекция растений 124: 507-510. DOI: 10.1111 / j.1439-0523.2005.01135.x
  24. ^ Тепличные растения, декоративно-черная корневая гниль. Справочники по борьбе с вредителями на северо-западе Тихоокеанского региона. Получено 18 октября 2020 г. с https://pnwhandbooks.org/plantdisease/host-disease/greenhouse-plants-ornamental-black-root-rot.
  25. ^ a b Бенсон, DM, Холл, JL, Мурман, GW, Дотри, ML, Чейз, AR и Ламур, KH 2001. Пуансеттия: Рождественский цветок. Возможности APSnet. В сети. DOI: 10.1094 / APSnetFeature-2001-1201 https://www.apsnet.org/edcenter/apsnetfeatures/Pages/PoinsettiaFlower.aspx
  26. ^ а б Мондаль, AH; Nehl, DB; Аллен, SJ (2005). «Ацибензолар-S-метил вызывает системную резистентность хлопка против черной корневой гнили, вызываемой Thielaviopsis basicola». Австралазийская патология растений . 34 (4): 499–507. DOI : 10.1071 / AP05089 . ISSN 0815-3191 . S2CID 37007553 .  
  27. ^ a b Pscheidt, JW "Черная корневая гниль: Thielaviopsis basicola" (PDF) . Черная корневая гниль: Thielaviopsis basicola . Корнелл Университет.
  28. ^ a b «Черная корневая гниль (Thielaviopsis basicola) в Программе комплексной борьбы с вредителями теплиц - CT» . ipm.uconn.edu . Проверено 8 декабря 2016 .
  29. ^ "Thielaviopsis basicola" . projects.ncsu.edu . Проверено 8 декабря 2016 .
  30. ^ Лихи, Роберт. «Черная корневая гниль анютиных глазок» (PDF) . Отдел растениеводства .
  31. ^ a b c Сильва, Катчен Джуллиани П., Махна, Нассер, Моу, Чжунлин и Фолта, Кевин М. 2018. NPR1 как стратегия защиты трансгенных культур в садоводческих видах. Исследования в области садоводства 5:15. DOI: 10.1038 / s41438-018-0026-1
  32. ^ a b Lambe, RC, and Ridings, WH 1979. Черная корневая гниль японского падуба. Циркуляр патологии растений. № 204. https://www.fdacs.gov/content/download/11211/file/pp204.pdf
  33. ^ Хансен, Мэри Энн. Черная корневая гниль японского падуба. Публикация 450-606 по расширению сотрудничества штата Вирджиния. https://vtechworks.lib.vt.edu/bitstream/handle/10919/48796/450-606_pdf.pdf?sequence=1&isAllowed=y
  34. ^ a b c Хайек, Соукайна, Джанинацци-Пирсон, Вивьен, Джанинацци, Сильвио и Франкен, Филипп. 2014. Выяснение механизмов индуцированной микоризой устойчивости к Thielaviopsis basicola с помощью целевого анализа транскриптов генов Petunia hybrida. Физиологическая и молекулярная патология растений 88: 67-76. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pmpp.2014.09.003