Различные доноры/ресиверы электронов (обозначенные как «A» и «AH 2 » в приведенном выше уравнении реакции) наблюдаются в микроорганизмах, которые используют CODH. Несколько примеров кофакторов переноса электронов включают ферредоксин , НАДФ+/НАДФН и комплексы флавопротеинов, такие как флавинадениндинуклеотид (ФАД). [1] [2] [3] Дегидрогеназы монооксида углерода поддерживают метаболизм различных прокариот, включая метаногены , аэробные карбоксидотрофы, ацетогены , сульфатредукторы и гидрогеногенные бактерии. Двунаправленная реакция, катализируемая CODH, играет роль в углеродном цикле .позволяя организмам использовать СО в качестве источника энергии и использовать СО 2 в качестве источника углерода. CODH может образовывать монофункциональный фермент, как в случае Rhodospirillum rubrum , или может образовывать кластер с ацетил-КоА-синтазой, как было показано у M.thermoacetica . При совместном действии либо как структурно независимые ферменты, либо в составе бифункциональной единицы CODH/ACS, два каталитических центра являются ключевыми для фиксации углерода в восстановительном пути ацетил-КоА . Микробные организмы ( как аэробные , так и анаэробные ) кодируют и синтезируют CODH для этой цели. фиксации углерода (окисление CO и CO 2снижение). В зависимости от прикрепленных дополнительных белков (кластеры A, B, C, D) они выполняют различные каталитические функции, включая восстановление кластеров [4Fe-4S] и вставку никеля. [4]
Этот фермент принадлежит к семейству оксидоредуктаз , особенно тех, которые действуют на альдегидную или оксогруппу донора с другими акцепторами. Систематическое название этого класса ферментов — угарный газ: акцепторная оксидоредуктаза. Другие широко используемые названия включают анаэробную дегидрогеназу монооксида углерода, оксигеназу монооксида углерода, дегидрогеназу монооксида углерода и окись углерода: (акцепторную) оксидоредуктазу.
Аэробные карбоксидотрофные бактерии используют медно-молибденовые флавоферменты. Анаэробные бактерии используют ХПКГ на основе никеля и железа из-за их чувствительной к кислороду природы. CODH, содержащий активный центр Mo-[2Fe-2S]-FAD, был обнаружен в аэробных бактериях, в то время как отдельный класс ферментов Ni-[3Fe-4S] CODH был выделен из анаэробных бактерий. [5] [6] [7] Оба класса CODH катализируют обратимую конверсию между двуокисью углерода (CO 2 ) и окисью углерода (CO). ХОДГ существует как в монофункциональной, так и в бифункциональной формах. В последнем случае ХОДГ образует бифункциональный кластер с ацетил-КоА-синтазой , что было хорошо охарактеризовано у анаэробных бактерий Moorella thermoacetica . [8] [9]
Структура
Структура CODH/ACS в M.thermoacetica. Показаны альфа (ACS) и бета (CODH) субъединицы. (1) A-кластер Ni-[4Fe-4S]. (2) C-кластер Ni-[3Fe- 4S]. (3) B-кластер [4Fe-4S]. (4) D-кластер [4Fe-4S].Разработан из 3I01
Гомодимерный Ni-CODH состоит из пяти комплексов металлов, называемых кластерами. Каждый из них отличается индивидуальной координационной геометрией , наличием никеля и расположением активного центра либо в субъединице α, либо в β. [10] Несколько исследовательских групп предложили кристаллические структуры тетрамерного фермента α 2 β 2 CODH/ACS из ацетогенных бактерий M. thermoacetica , включая два недавних примера с 2009 года: 3I01 2Z8Y.. Две β-единицы являются местом активности CODH и образуют центральное ядро фермента. Всего фермент массой 310 кДа содержит семь кластеров железо-сера [4Fe-4S]. Каждая единица α содержит один металлический кластер. Вместе две β-единицы содержат пять кластеров трех типов. Каталитическая активность CODH проявляется в кластерах Ni-[3Fe-4S] C, в то время как внутренние кластеры [4Fe-4S] B и D переносят электроны от C-кластера к внешним переносчикам электронов, таким как ферредоксин . Активность ACS возникает в А-кластере, расположенном в двух внешних α-единицах. [6] [7]
Примечательной особенностью CODH/ACS M. thermoacetica является внутренний газовый туннель, соединяющий несколько активных центров. [11] Полная роль газового канала в регулировании скорости каталитической активности все еще является предметом исследования, но несколько исследований подтверждают представление о том, что молекулы CO действительно перемещаются непосредственно из C-кластера в активный центр ACS, не покидая его. фермент. Например, на скорость активности ацетил-КоА-синтазы в бифункциональном ферменте не влияет добавление гемоглобина, который будет конкурировать за CO в нерасфасованном растворе [12] , а исследования изотопного мечения показывают, что монооксид углерода, полученный из C-кластера предпочтительно используется в A-кластере по сравнению с немеченым CO в растворе. [13]Белковая инженерия CODH/ACS у M.thermoacetica показала, что мутирующие остатки, функционально блокирующие туннель, останавливали синтез acety-CoA, когда присутствовал только CO 2 . [14] Открытие функционального туннеля CO помещает CODH в растущий список ферментов, которые независимо развили эту стратегию для переноса реактивных промежуточных продуктов из одного активного центра в другой. [15]
Механизмы реакции
окислительный
Каталитический центр CODH, называемый C-кластером, представляет собой кластер [3Fe-4S], связанный с фрагментом Ni-Fe. Две основные аминокислоты (Lys587 и His 113 в M.thermoacetica ) находятся вблизи С-кластера и способствуют кислотно-щелочной химии, необходимой для ферментативной активности. [16] Основываясь на ИК-спектрах, указывающих на присутствие комплекса Ni-CO, предлагаемая первая стадия окислительного катализа CO в CO 2 включает связывание CO с Ni 2+ и соответствующее комплексообразование Fe 2+ с молекулой воды. . [17]
Связывание молекулы СО вызывает сдвиг координации атома Ni от квадратно-плоской к квадратно-пирамидальной геометрии. [18] Доббек и др. далее предполагают, что движение цистеинового лиганда атома никеля приближает CO к гидроксильной группе и облегчает катализируемую основанием нуклеофильную атаку связанной железом гидроксильной группы. В качестве промежуточного соединения предложен карбоксильный мостик между атомами Ni и Fe. [19] Декарбоксилирование приводит к высвобождению CO 2и уменьшение кластера. Хотя результирующая промежуточная степень окисления Ni и степень, в которой электроны распределяются по всему кластеру Ni-[3Fe-4S], являются предметом некоторых дискуссий, электроны в восстановленном C-кластере переносятся в соседние B и D [4Fe -4S], возвращая С-кластер Ni-[3Fe-4S] в окисленное состояние и восстанавливая одноэлектронный переносчик ферредоксин . [20] [21]
редуктивный
Учитывая роль CODH в фиксации CO 2 , в литературе по биохимии восстановительный механизм обычно рассматривается как «прямой обратный» окислительному механизму по «принципу микрообратимости». [22] В процессе восстановления диоксида углерода С-кластер фермента должен сначала быть активирован из окисленного состояния в восстановленное, прежде чем образуется связь Ni-CO 2 . [23]
Экологическая значимость
Дегидрогеназа моноксида углерода тесно связана с регулированием атмосферных уровней CO и CO 2 , поддерживая оптимальные уровни CO, подходящие для других форм жизни. Микробные организмы полагаются на эти ферменты как для сохранения энергии, так и для связывания CO 2 . Часто кодирование и синтез нескольких уникальных форм CODH для целевого использования. Дальнейшие исследования конкретных типов CODH показывают, что CO используется и конденсируется с CH 3 ( метильные группы ) с образованием ацетил-КоА. [24] Анаэробные микроорганизмы, такие как ацетогены , проходят путь Вуда-Льюнгдала , полагаясь на ХПКГ для производства CO путем восстановления CO2 .необходим для синтеза ацетил-КоА из метилового, кофермента А (КоА) и корриноидного железо-серного белка . [25] Другие типы показывают, что CODH используется для создания протонной движущей силы в целях производства энергии. CODH используется для окисления CO с образованием двух протонов, которые впоследствии восстанавливаются с образованием диводорода (H 2 , известного в просторечии как молекулярный водород ), обеспечивая необходимую свободную энергию для запуска генерации АТФ. [26]
использованная литература
^ Бакель В., Тауэр Р.К. (2018). «+ (Rnf) как акцепторы электронов: исторический обзор» . Границы микробиологии . 9 : 401. doi : 10.3389/fmicb.2018.00401 . ПВК 5861303 . PMID 29593673 .
↑ Краке Ф., Вирдис Б., Бернхардт П.В., Рабей К., Кремер Д.О. (декабрь 2016 г.) . «Clostridium autoethanogenum за счет доставки внеклеточных электронов» . Биотехнология для биотоплива . 9 (1): 249. doi : 10.1186/s13068-016-0663-2 . ПВК 5112729 . PMID 27882076 .
^ Ван ден Берг В.А., Хаген В.Р., ван Донген В.М. (февраль 2000 г.). «Гибридно-кластерный белок («призматический белок») из Escherichia coli. Характеристика гибридно-кластерного белка, окислительно-восстановительные свойства кластеров [2Fe-2S] и [4Fe-2S-2O] и идентификация ассоциированной НАДН-оксидоредуктазы, содержащей ФАД и [2Fe-2S]» . Европейский журнал биохимии . 267 (3): 666–76. doi : 10.1046/j.1432-1327.2000.01032.x . PMID 10651802 .
↑ Хадж-Саид Дж., Панделия М.Е., Леже С., Фурмонд В., Дементин С. (декабрь 2015 г.). «Дегидрогеназа угарного газа из Desulfovibrio vulgaris» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Биоэнергетика . 1847 (12): 1574–1583. doi : 10.1016/j.bbabio.2015.08.002 . PMID 26255854 .
^ Чон Дж., Фесселер Дж., Гетцль С., Доббек Х. (2014). «Глава 3. Угарный газ. Токсичный газ и топливо для анаэробов и аэробов: дегидрогеназы угарного газа ». В Kroneck PM, Torres ME (ред.). Биогеохимия газообразных соединений окружающей среды, обусловленная металлами . Ионы металлов в науках о жизни. 14 . Спрингер. стр. 37–69. doi : 10.1007/978-94-017-9269-1_3 . PMID 25416390 .
^ a b Доббек Х., Светличный В., Гремер Л., Хубер Р., Мейер О. (август 2001 г.). «Кристаллическая структура дегидрогеназы монооксида углерода обнаруживает кластер [Ni-4Fe-5S]». Наука . 293 (5533): 1281–1285. Бибкод : 2001Sci...293.1281D . doi : 10.1126/science.1061500 . PMID 11509720 . S2CID 21633407 .
^ a b Ragsdale S (сентябрь 2010 г.). Сигель Х., Сигель А. (ред.). Связи металл-углерод в ферментах и кофакторах . Ионы металлов в науках о жизни. Королевское химическое общество. дои : 10.1039/9781847559333 . ISBN 978-1-84755-915-9.
↑ Дуков Т.И., Бласиак Л.С., Серавалли Дж., Рэгсдейл С.В., Дреннан К.Л. (март 2008 г.). «Ксенон в и в конце туннеля бифункциональной дегидрогеназы моноксида углерода / ацетил-КоА-синтазы» . Биохимия . 47 (11): 3474–83. дои : 10.1021/bi702386t . ПМС 3040099 . PMID 18293927 .
↑ Tan X, Volbeda A, Fontecilla-Camps JC, Lindahl PA (апрель 2006 г.). «Функция туннеля в ацетилкоэнзим А-синтазе / дегидрогеназе монооксида углерода». Журнал биологической неорганической химии . 11 (3): 371–378. doi : 10.1007/s00775-006-0086-9 . PMID 16502006 . S2CID 25285535 .
^ Wittenborn EC, Merrouch M, Ueda C, Fradale L, Léger C, Fourmond V и др. (октябрь 2018 г.). «Окислительно-восстановительные перестройки кластера NiFeS дегидрогеназы моноксида углерода» . электронная жизнь . 7 : e39451. doi : 10.7554/eLife.39451 . ПВК 6168284 . PMID 30277213 .
↑ Дуков Т.И., Бласиак Л.С., Серавалли Дж., Рэгсдейл С.В., Дреннан К.Л. (март 2008 г.). «Ксенон в и в конце туннеля бифункциональной дегидрогеназы моноксида углерода / ацетил-КоА-синтазы» . Биохимия . 47 (11): 3474–83. дои : 10.1021/bi702386t . ПМС 3040099 . PMID 18293927 .
↑ Tan X, Loke HK, Fitch S, Lindahl PA (апрель 2005 г.). «Туннель ацетил-кофермента синтазы / дегидрогеназы моноксида углерода регулирует доставку CO к активному центру». Журнал Американского химического общества . 127 (16): 5833–9. дои : 10.1021/ja043701v . PMID 15839681 .
↑ Weeks A, Lund L, Raushel FM (октябрь 2006 г.). «Туннелирование промежуточных продуктов в реакциях, катализируемых ферментами». Современное мнение в области химической биологии . 10 (5): 465–72. doi : 10.1016/j.cbpa.2006.08.008 . PMID 16931112 .
↑ Ragsdale SW (август 2006 г.). «Металлы и их каркасы для обеспечения сложных ферментативных реакций». Химические обзоры . 106 (8): 3317–37. DOI : 10.1021/ cr0503153 . PMID 16895330 .
↑ Chen J, Huang S, Seravalli J, Gutzman H, Swartz DJ, Ragsdale SW, Bagley KA (декабрь 2003 г.). «Инфракрасные исследования связывания монооксида углерода с дегидрогеназой / ацетил-КоА-синтазой монооксида углерода из Moorella thermoacetica». Биохимия . 42 (50): 14822–30. дои : 10.1021/bi0349470 . PMID 14674756 .
↑ Доббек Х., Светличный В., Гремер Л., Хубер Р., Мейер О. (август 2001 г.). «Кристаллическая структура дегидрогеназы монооксида углерода обнаруживает кластер [Ni-4Fe-5S]». Наука . 293 (5533): 1281–1285. Бибкод : 2001Sci...293.1281D . doi : 10.1126/science.1061500 . PMID 11509720 . S2CID 21633407 .
^ Ха С.В., Корбас М., Клепш М., Мейер-Клауке В., Мейер О., Светличный В. (апрель 2007 г.). «Взаимодействие цианида калия с кластером активных центров [Ni-4Fe-5S] CO-дегидрогеназы из Carboxydothermus hydronoformans» . Журнал биологической химии . 282 (14): 10639–46. doi : 10.1074/jbc.M610641200 . PMID 17277357 .
^ Ван В.К., Рэгсдейл С.В., Армстронг Ф.А. (2014). «Исследование эффективных электрокаталитических взаимопревращений диоксида углерода и монооксида углерода никельсодержащими дегидрогеназами монооксида углерода». В Питере М. Х. Кронеке, Марте Э. Соса Торрес (ред.). Биогеохимия газообразных соединений окружающей среды, обусловленная металлами . Ионы металлов в науках о жизни. 14 . Спрингер. стр. 71–97. doi : 10.1007/978-94-017-9269-1_4 . ISBN 978-94-017-9268-4. ПМС 4261625 . PMID 25416391 .
↑ Ragsdale SW (ноябрь 2007 г.). «Никель и углеродный цикл» . Журнал неорганической биохимии . 101 (11–12): 1657–66. doi : 10.1016/j.jinorgbio.2007.07.014 . ПМК 2100024 . PMID 17716738 .
↑ Рэгсдейл С.В., Пирс Э. (декабрь 2008 г.). «Ацетогенез и путь фиксации CO (2) Вуда-Льюнгдала» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Белки и протеомика . 1784 (12): 1873–1898. doi : 10.1016/j.bbapap.2008.08.012 . ПВК 2646786 . PMID 18801467 .
↑ Feng J, Lindahl PA (февраль 2004 г.). «Дегидрогеназа монооксида углерода из Rhodospirillum rubrum: влияние окислительно-восстановительного потенциала на катализ». Биохимия . 43 (6): 1552–159. дои : 10.1021/bi0357199 . PMID 14769031 .
↑ Хадж-Саид Дж., Панделия М.Е., Леже С., Фурмонд В., Дементин С. (декабрь 2015 г.). «Дегидрогеназа угарного газа из Desulfovibrio vulgaris» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Биоэнергетика . 1847 (12): 1574–1583. doi : 10.1016/j.bbabio.2015.08.002 . PMID 26255854 .
↑ Рэгсдейл С.В., Пирс Э. (декабрь 2008 г.). «Ацетогенез и путь фиксации CO (2) Вуда-Льюнгдала» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Белки и протеомика . 1784 (12): 1873–1898. doi : 10.1016/j.bbapap.2008.08.012 . ПВК 2646786 . PMID 18801467 .
↑ Ensign SA, Ludden PW (сентябрь 1991 г.). «Характеристика системы окисления CO / выделения H2 у Rhodospirillum rubrum. Роль железо-серного белка массой 22 кДа в опосредовании переноса электронов между дегидрогеназой монооксида углерода и гидрогеназой» . Журнал биологической химии . 266 (27): 18395–403. doi : 10.1016/S0021-9258(18)55283-2 . PMID 1917963 .
дальнейшее чтение
Дреннан К.Л., Хео Дж., Синчак М.Д., Шрайтер Э., Ладден П.В. (октябрь 2001 г.). «Жизнь на монооксиде углерода: рентгеновская структура Rhodospirillum rubrum Ni-Fe-S дегидрогеназы монооксида углерода» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 98 (21): 11973–8. Бибкод : 2001PNAS...9811973D . doi : 10.1073/pnas.211429998 . ПМС 59822 . PMID 11593006 .
Чон Дж. Х., Мартинс Б. М., Доббек Х. (2019). «Дегидрогеназы монооксида углерода». В Ху И (ред.). Металлопротеины . Методы молекулярной биологии. 1876 . Нью-Йорк: Спрингер. стр. 37–54. doi : 10.1007/978-1-4939-8864-8_3 . ISBN 9781493988631. PMID 30317473 .
Чон Дж. Х., Доббек Х. (ноябрь 2007 г.). «Активация углекислого газа в Ni, Fe-кластере анаэробной дегидрогеназы монооксида углерода». Наука . Американская ассоциация развития науки. 318 (5855): 1461–1464. Бибкод : 2007Sci...318.1461J . doi : 10.1126/science.1148481 . JSTOR 20051712 . PMID 18048691 . S2CID 41063549 .
Доббек Х., Светличный В., Гремер Л., Хубер Р., Мейер О. (август 2001 г.). «Кристаллическая структура дегидрогеназы монооксида углерода обнаруживает кластер [Ni-4Fe-5S]». Наука . 293 (5533): 1281–1285. Бибкод : 2001Sci...293.1281D . doi : 10.1126/science.1061500 . PMID 11509720 . S2CID 21633407 .* Хегг Э.Л. (октябрь 2004 г.). «Раскрытие структуры и механизма ацетил-кофермента А-синтазы». Отчеты о химических исследованиях . 37 (10): 775–83. doi : 10.1021/ar040002e . PMID 15491124 . S2CID 29401674 . *
Ху З., Спенглер Н.Дж., Андерсон М.Е., Ся Дж., Ладден П.В., Линдал П.А., Мюнк Э. (1 января 1996 г.). «Природа C-кластера в Ni-содержащих дегидрогеназ монооксида углерода». Журнал Американского химического общества . 118 (4): 830–845. дои : 10.1021/ja9528386 . ISSN 0002-7863 .
Варфоломей Г.В., Александр М. (май 1979 г.). «Микробный метаболизм оксида углерода в культуре и почве» . Прикладная и экологическая микробиология . 37 (5): 932–937. Бибкод : 1979ApEnM..37..932B . doi : 10.1128/AEM.37.5.932-937.1979 . ПВК 243327 . PMID 485139 .
втеАльдегид/ оксооксидоредуктазы ( EC 1.2)
1.2.1 : НАД или НАДФ
Альдегиддегидрогеназа
Ацетальдегиддегидрогеназа
Длинноцепочечная альдегиддегидрогеназа
1.2.2 : цитохром
Формиатдегидрогеназа (цитохром)
1.2.3 : кислород
Альдегидоксидаза
1.2.4 : дисульфид
Оксоглутаратдегидрогеназный комплекс
Пируватдегидрогеназа
Комплекс дегидрогеназы альфа-кетокислоты с разветвленной цепью
BCKDHA
БКДХБ
ДБТ
междугородний
1.2.7 : железо-серный белок
Пируватсинтаза
втеФерменты
Мероприятия
Активный сайт
Сайт привязки
Каталитическая триада
Оксианион отверстие
Ферментная распущенность
Каталитически совершенный фермент
Коэнзим
Кофактор
Ферментный катализ
Регулирование
Аллостерическая регуляция
Кооперативность
Ингибитор фермента
Активатор ферментов
Классификация
номер ЕС
Суперсемейство ферментов
Семейство ферментов
Список ферментов
Кинетика
Кинетика ферментов
Диаграмма Иди – Хофсти
Сюжет Хейнса – Вульфа
Сюжет Лайнуивера – Берка
Кинетика Михаэлиса – Ментена
Типы
Оксидоредуктазы EC1 ( список )
Трансферазы EC2 ( список )
EC3 гидролазы ( список )
Лиазы EC4 ( список )
Изомеры EC5 ( список )
Лигазы EC6 ( список )
Транслоказы EC7 ( список )
Портал :
Биология
Категории :
ЕС 1.2.99
Ферменты железа
Цинковые ферменты
Никелевые ферменты
Железо-серные ферменты
Ферменты известной структуры
Белковые семейства
Монооксид углерода
Скрытые категории:
Все статьи с мертвыми внешними ссылками
Статьи с мертвыми внешними ссылками за ноябрь 2016 г.