Компонент DctP трехчастичного АТФ-независимого периплазматического переносчика | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | ||||||||
Условное обозначение | DctP | |||||||
Pfam | PF03480 | |||||||
Клан пфам | CL0177 | |||||||
ИнтерПро | IPR018389 | |||||||
TCDB | 2.A.56 | |||||||
|
Компонент DctQ трехчастичного АТФ-независимого периплазматического переносчика | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | ||||||||
Условное обозначение | DctQ | |||||||
Pfam | PF04290 | |||||||
ИнтерПро | IPR007387 | |||||||
TCDB | 2.A.56 | |||||||
|
DctM-подобные транспортеры | ||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Идентификаторы | ||||||||
Условное обозначение | DctM | |||||||
Pfam | PF06808 | |||||||
Клан пфам | CL0182 | |||||||
ИнтерПро | IPR010656 | |||||||
TCDB | 2.A.56 | |||||||
|
Трехкомпонентные АТФ-независимые периплазматические переносчики ( переносчики TRAP) представляют собой большое семейство переносчиков растворенных веществ, обнаруженных у бактерий и архей , но не у эукариот , которые, по-видимому, специфичны для поглощения органических кислот или родственных молекул, содержащих карбоксилатную или сульфонатную группу. Они уникальны тем, что используют субстрат-связывающий белок (SBP) в сочетании со вторичным транспортером .
Транспортеры TRAP были обнаружены в лаборатории профессора Дэвида Дж. Келли в Университете Шеффилда , Великобритания. Его группа работала над механизмом, используемым фотосинтезирующей бактерией Rhodobacter capsulatus для поглощения определенных дикарбоновых кислот . Они охарактеризовали компонент связывающего белка (DctP) транспортера, который распознает эти соединения, который, как они предполагали, будет частью типичного транспортера ABC , но когда они секвенировали гены, окружающие dctP, они обнаружили два других гена, кодирующих интегральные мембранные белки, dctQ и dctM. , но отсутствуют гены, кодирующие компоненты транспортера ABC. [1]Они также показали, что поглощение одних и тех же дикарбоксилатов не зависит от АТФ и что для поглощения требуется электрохимический ионный градиент, что делает его уникальным зависимым от связывающих белков вторичным переносчиком. [1]
С этих ранних исследований, стало ясно , что TRAP транспортеры присутствуют во многих бактерий и архебактерий , [2] с большим количеством бактерий , обладающих несколькими TRAP транспортеров, некоторые , имеющие более 20 различных систем. [3]
На сегодняшний день большинство субстратов для транспортеров TRAP содержат общую особенность, заключающуюся в том, что они представляют собой органические кислоты. [4] Сюда входят C4-дикарбоксилаты, такие как сукцинат , малат и фумарат , [1] кетокислоты, такие как пируват и альфа-кетобутират [5] [6], и сахарная кислота, N- ацетилнейраминовая кислота (или сиаловая кислота ). . [7] Другие субстраты включают совместимые растворенные вещества эктоин, гидроксиэктоин и пироглутамат . [4]
Все известные транспортеры TRAP содержат 3 белковых домена. Это белок, связывающий растворенные вещества (SBP), малый домен мембранного белка и большой домен мембранного белка. В соответствии с номенклатурой первого охарактеризованного транспортера TRAP, DctPQM, эти субъединицы обычно называют P, Q и M соответственно. [4] Около 10% транспортеров TRAP имеют естественные генетические слияния между двумя компонентами мембранных белков, и в одном хорошо изученном примере этого в специфическом для сиаловой кислоты транспортере TRAP от Haemophilus influenzae слитый ген был назван siaQM. Предполагается, что большая субъединица M содержит 12 трансмембранных спиралей, а малая субъединица Q - 4 трансмембранные спирали, а слитые белки QM, как предполагается, содержат 17 трансмембранных спиралей. [4]
При использовании SBP транспортеры TRAP имеют некоторое сходство с транспортерами ABC в том, что субстрат для транспортера первоначально распознается за пределами цитоплазматической мембраны. У грамотрицательных бактерий SBP обычно свободен в периплазме и экспрессируется на относительно высоких уровнях по сравнению с мембранными доменами. [1] У грамположительных бактерий и архей SBP привязан к цитоплазматической мембране. В обоих типах систем SBP связывается с субстратом, обычно с низким микромолярным сродством [4].что вызывает значительное изменение конформации белка, подобное закрытию венерианской мухоловки. Захваченный субстрат затем доставляется к мембранным доменам транспортера, где электрохимический ионный градиент каким-то образом используется для открытия SBP, извлечения субстрата и катализатора его движения через мембрану. Для транспортера SiaPQM TRAP, который был изучен в полностью восстановленной форме in vitro , для поглощения используется Na+
градиент, а не градиент протонов, чтобы стимулировать захват. [8] Системы SiaPQM также проявляют уникальные свойства для вторичного транспортера в том, что они не могут катализировать двунаправленный транспорт, поскольку SBP требует, чтобы движение происходило только в направлении поглощения клеткой. [8]
После первой структуры TRAP SBP в 2005 году [9] в настоящее время доступно более 10 различных структур. [10] [11] [12] Все они имеют очень похожую общую структуру с двумя глобулярными доменами, соединенными шарниром. Сайт связывания субстрата образован обоими доменами, которые окружают субстрат. Высококонсервативный остаток аргинина в SBP TRAP образует солевой мостик с карбоксилатной группой на субстрате, что важно для распознавания субстрата. [10]
В настоящее время отсутствуют структуры для мембранных доменов какого-либо транспортера TRAP. Неизвестно даже, какая субъединица (-ы) непосредственно взаимодействовала с субъединицей SBP во время транспортного цикла.