ДНК-полимераза V ( Pol V ) представляет собой фермент полимеразы , участвующий в механизмах репарации ДНК у бактерий, таких как Escherichia coli . Он состоит из гомодимера UmuD' и мономера UmuC , образуя белковый комплекс UmuD'2C. [1] Он является частью Y-семейства ДНК-полимераз, которые способны выполнять синтез ДНК-трансляции (TLS). [2] Транслезионные полимеразы обходят повреждения ДНК во время репликации ДНК - если повреждение не репарируется или не обходится, вилка репликации может остановиться и привести к гибели клетки. [3]Однако Y-полимеразы имеют низкую точность последовательности во время репликации (склонны добавлять неправильные нуклеотиды). Когда белки UmuC и UmuD' были первоначально обнаружены в E. coli , считалось, что они являются агентами, которые ингибируют верную репликацию ДНК и вызывают высокий уровень мутаций в синтезе ДНК после воздействия УФ-света . [2] Полимеразная функция Pol V не была обнаружена до конца 1990-х годов, когда был успешно извлечен UmuC, последующие эксперименты однозначно доказали, что UmuD'2C является полимеразой. Это открытие привело к обнаружению многих ортологов Pol V и открытию Y-семейства полимераз. [4]
Pol V функционирует как полимераза TLS (синтез ДНК трансфекции) в E. coli как часть SOS-ответа на повреждение ДНК. [4] Когда ДНК повреждена, обычные полимеразы синтеза ДНК не могут добавить dNTP на вновь синтезированную цепь. ДНК-полимераза III (Pol III) является обычной ДНК-полимеразой E. coli . Поскольку Pol III останавливается, не в силах добавить нуклеотиды к зарождающейся цепи ДНК, клетка подвергается риску коллапса репликационной вилки и гибели клетки. Функция Pol V TLS зависит от ассоциации с другими элементами ответа SOS, что наиболее важно, трансфузионная активность Pol V сильно зависит от образования нуклеопротеиновых филаментов RecA . [5]Pol V может использовать TLS на поражениях, которые блокируют репликацию или неправильное кодирование повреждений, которые изменяют основания и приводят к неправильному спариванию оснований . Тем не менее, он не может транслировать через 5' → 3' ошибки никнейма магистрали. [6] Pol V также не обладает экзонуклеазной активностью, что делает невозможным корректировку синтеза, что делает его подверженным ошибкам. [7]
SOS-ответ
Реакция SOS у E. coli пытается смягчить эффект повреждающего стресса в клетке. Роль Pol V в SOS-ответе, запускаемом УФ-излучением, описывается следующим образом:
Pol III останавливается на месте поражения.
Репликационная геликаза ДНК DnaB продолжает расширять репликативную вилку , создавая сегменты одноцепочечной ДНК (оцДНК) перед повреждением.
RecA рекрутируется и загружается в одноцепочечную ДНК с помощью RecFOR , заменяя SSB. Формирование нуклеопротеиновой нити RecA (RecA*).
RecA функционирует через белки-посредники для активации Pol V (см. Регламент).
Pol V получает доступ к 3'-ОН растущей цепи ДНК и удлиняет цепь за место повреждения.
Pol III возобновляет удлинение. [8]
Регулирование
Pol V экспрессируется в клетке только во время ответа SOS. Он очень жестко регулируется на разных уровнях экспрессии белка и с помощью различных механизмов, чтобы избежать его активности, если только это не является абсолютно необходимым для выживания клетки. [8] Строгая регуляция Pol V проистекает из его плохой точности репликации, Pol V сильно мутагенен и используется в качестве последнего средства в механизмах репарации ДНК. Таким образом, экспрессия комплекса UmuD'2C занимает 45–50 минут после воздействия УФ-излучения. [6]
Транскрипционная регуляция
Транскрипция генов SOS-ответа негативно регулируется репрессором LexA . LexA связывается с промотором оперона UmuDC и ингибирует транскрипцию гена. [1] Повреждение ДНК в клетке приводит к образованию RecA*. RecA* взаимодействует с LexA и стимулирует его протеолитическую активность , что приводит к ауторасщеплению репрессора, освобождая оперон для транскрипции. Оперон UmuDC транскрибируется и транслируется в UmuC и UmuD. [5]
Посттрансляционное регулирование
Образование комплекса UmuD'2C ограничивается образованием UmuD' из UmuD. [7] UmuD состоит из полипептида, состоящего из 139 аминокислотных остатков, которые образуют стабильную третичную структуру, однако он нуждается в посттрансляционной модификации , чтобы быть в активной форме. [1] UmuD обладает самопротеолитической активностью, которая активируется RecA, он удаляет 24 аминокислоты на N-конце , превращая его в UmuD'. UmuD' может образовывать гомодимер и связываться с UmuC с образованием активного комплекса UmuD'2C. [5]
Функциональная регуляция
Комплекс UmuD'2C неактивен, если он не связан с RecA*. Pol V напрямую взаимодействует с RecA* на 3'-конце нуклеопротеиновой нити; это место зарождающейся цепи ДНК, где Pol V перезапускает синтез ДНК . [8] Кроме того, было показано, что путь REV1 /REV3L/REV7 необходим для синтеза TLS, опосредованного ДНК-полимеразой V. [9]
использованная литература
^ a b c Sutton MD, Walker GC (июль 2001 г.). «Управление ДНК-полимеразами: координация репликации ДНК, репарация ДНК и рекомбинация ДНК» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 98 (15): 8342–9. doi : 10.1073/pnas.111036998 . ПМС 37441 . PMID 11459973 .
^ a b Ян В (февраль 2003 г.). «ДНК-полимеразы восстановления повреждений Y» . Текущее мнение в структурной биологии . 13 (1): 23–30. doi : 10.1016/S0959-440X(02)00003-9 . PMID 12581656 .
^ Гаррет Р.Х. (2013). Биохимия (1-е канадское изд.). Торонто: образование Нельсона. п. 343. ИСБН 9780176502652.
^ a b Гудман М.Ф., Вудгейт Р. (октябрь 2013 г.). «ДНК-полимеразы трансфекции» . Перспективы Колд-Спринг-Харбор в биологии . 5 (10): а010363. doi : 10.1101/cshperspect.a010363 . ПВК 3783050 . PMID 23838442 .
^ a b c Ярош Д.Ф., Бёнинг П.Дж., Коэн С.Е., Уокер Г.К. (февраль 2007 г.). «ДНК-полимеразы Y-семейства в Escherichia coli». Тенденции в микробиологии . 15 (2): 70–7. doi : 10.1016/j.tim.2006.12.004 . hdl : 1721.1/70041 . PMID 17207624 .
^ a b Патель М., Цзян К., Вудгейт Р., Кокс М.М., Гудман М.Ф. (июнь 2010 г.). «Новая модель SOS-индуцированного мутагенеза: как белок RecA активирует ДНК-полимеразу V» . Критические обзоры по биохимии и молекулярной биологии . 45 (3): 171–84. дои : 10.3109/10409238.2010.480968 . ПВК 2874081 . PMID 20441441 .
^ а б Ян В (май 2014 г.). «Обзор ДНК-полимераз Y-семейства и тематическое исследование ДНК-полимеразы η человека» . Биохимия . 53 (17): 2793–803. дои : 10.1021/bi500019s . ПМК 4018060 . PMID 24716551 .
^ a b c Fuchs RP, Fujii S (декабрь 2013 г.). «Синтез трансфузии ДНК и мутагенез у прокариот» . Перспективы Колд-Спринг-Харбор в биологии . 5 (12): а012682. doi : 10.1101/cshperspect.a012682 . ПМС 3839610 . PMID 24296168 .
↑ Doles J, Oliver TG, Cameron ER, Hsu G, Jacks T, Walker GC, Hemann MT (ноябрь 2010 г.). «Подавление Rev3, каталитической субъединицы Pol{zeta}, повышает чувствительность лекарственно-устойчивых опухолей легких к химиотерапии» . Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки . 107 (48): 20786–91. doi : 10.1073/pnas.1011409107 . ПВК 2996428 . PMID 21068376 .
внешняя ссылка
Обзор всей структурной информации, доступной в PDB для UniProt : P0AG11 (белок E. coli UmuD) в PDBe-KB .
втеРепликация ДНК (сравнение прокариот с эукариотами )
Посвящение
Прокариот ( инициация )
Пререпликационный комплекс
днк
Геликаза
днкА
ДНК
Т7
Примас
ДНКG
Эукариотический ( препарат в фазе G1 )
Пререпликационный комплекс
Комплекс распознавания происхождения
ORC1
ORC2
ORC3
ORC4
ORC5
ORC6
CDC6
Cdt1
Поддержание минихромосомы
МСМ2
МСМ3
MCM4
MCM5
MCM6
MCM7
Лицензионный фактор
Автономно реплицирующаяся последовательность
Одноцепочечный связывающий белок
SSBP2
SSBP3
SSBP4
РНКаза H
РНКЭН1
РНКАЗЭН2А
Хеликаза : HFM1
Первая : PRIM1
ПРИМ2
Оба
Происхождение репликации / Ори / Репликон
Вилка репликации
Отстающие и лидирующие нити
Фрагменты Окадзаки
Грунтовка
Репликация
Прокариот ( удлинение )
Холофермент ДНК-полимеразы III
днк
днкЕ
ДНК
ДНК
днкQ
днк
днк
привет
ХолБ
холк
держать
отверстие
Реплисом
ДНК-лигаза
зажим ДНК
топоизомераза
ДНК-гираза
Прокариотическая ДНК-полимераза : ДНК-полимераза I