Амплификация с множественным замещением (MDA) представляет собой метод амплификации ДНК . Этот метод может быстро амплифицировать мельчайшие количества образцов ДНК до приемлемого количества для геномного анализа. Реакция начинается с отжига случайных гексамерных праймеров с матрицей: синтез ДНК осуществляется высокоточным ферментом , преимущественно ДНК-полимеразой Φ29 . По сравнению с обычными методами амплификации ПЦР , MDA не использует специфичные для последовательности праймеры, а амплифицирует всю ДНК, генерирует продукты большего размера с более низкой частотой ошибок и работает при постоянной температуре. MDA активно используется для полногеномной амплификации .(WGA) и является многообещающим методом для применения к секвенированию генома одной клетки и генетическим исследованиям на основе секвенирования.
Многие биологические и судебно -медицинские дела, связанные с генетическим анализом, требуют секвенирования ДНК из небольшого количества образцов, таких как ДНК из некультивируемых одиночных клеток или следовых количеств тканей, собранных с места преступления. Обычные методы амплификации ДНК, основанные на полимеразной цепной реакции ( ПЦР ), требуют специфичных для последовательности олигонуклеотидных праймеров и термостабильной (обычно Taq ) полимеразы и могут использоваться для создания значительных количеств ДНК из мельчайших количеств ДНК. Однако этого недостаточно для современных методов, использующих анализ ДНК на основе секвенирования. Следовательно, необходим более эффективный метод, не зависящий от последовательности, для амплификации мельчайших количеств ДНК, особенно в исследованиях генома одной клетки.
ДНК-полимераза бактериофага Φ29 представляет собой высокопроизводительный фермент , который может продуцировать ампликоны ДНК размером более 70 тысяч пар оснований. [1] Его высокая точность и 3'–5'-корректорная активность снижают частоту ошибок амплификации до 1 на 10 6 -10 7 оснований по сравнению с обычной Taq - полимеразой с зарегистрированной частотой ошибок 1 на 9000. [2] Реакцию можно проводить при умеренной изотермической температуре 30 °C, поэтому термоциклер не требуется . Он активно используется в бесклеточном клонировании — ферментативном методе амплификации ДНК in vitro без культивирования клеток иЭкстракция ДНК . Большой фрагмент ДНК-полимеразы Bst также используется в MDA, но Ф29 обычно предпочтительнее из-за его достаточного выхода продукта и корректирующей активности. [3]
Гексамерные праймеры представляют собой последовательности, состоящие из шести случайных нуклеотидов . Для применения MDA эти праймеры обычно модифицированы тиофосфатом на их 3'-конце, чтобы передать устойчивость к 3'-5' экзонуклеазной активности ДНК- полимеразы Ф29 . Реакции MDA начинаются с отжига таких праймеров на ДНК-матрице с последующим удлинением цепи, опосредованным полимеразой. В ходе реакции амплификации происходит все больше событий отжига праймеров.
Реакция амплификации инициируется, когда несколько гексамеров праймеров отжигаются на матрице. Когда синтез ДНК переходит к следующему стартовому сайту, полимераза вытесняет новообразованную цепь ДНК и продолжает ее удлинение. Смещение цепи создает вновь синтезированную одноцепочечную ДНК-матрицу для отжига большего количества праймеров. Дальнейший отжиг праймеров и смещение цепи на вновь синтезированной матрице приводит к гиперразветвленной сети ДНК. Деветвление последовательности во время амплификации приводит к высокому выходу продуктов. Для разделения сети ветвления ДНК используются нуклеазы S1 , расщепляющие фрагменты в местах смещения. Разрывы на полученных фрагментах ДНК восстанавливаются ДНК-полимеразой I.
MDA может генерировать 1–2 мкг ДНК из одной клетки с охватом генома до 99%. [4] Продукты также имеют более низкий уровень ошибок и большие размеры по сравнению с Taq - амплификации на основе ПЦР. [4] [5]
Общий рабочий процесс MDA: [6]
МДА дает достаточный выход продуктов ДНК. Это мощный инструмент амплификации молекул ДНК из образцов, таких как некультивируемые микроорганизмы или отдельные клетки, до количества, достаточного для проведения секвенирования . Большой размер продуктов ДНК, амплифицированных MDA, также обеспечивает желаемое качество образцов для определения размера аллелей полиморфных повторов. Его высокая точность также делает его надежным для использования при обнаружении аллеля однонуклеотидного полиморфизма (SNP). Благодаря смещению нитей при амплификации амплифицированная ДНК имеет достаточное покрытие исходных молекул ДНК, что обеспечивает высококачественный продукт для геномного анализа. Продукты смещенных цепей могут быть впоследствии клонированы в векторы для создания библиотеки для последующего секвенирования . реакции.
ADO определяется как случайная неамплификация одного из аллелей , присутствующих в гетерозиготном образце. В некоторых исследованиях сообщается, что уровень ADO для продуктов MDA составляет 0–60%. [7] Этот недостаток снижает точность генотипирования одного образца и ошибочный диагноз в других приложениях, связанных с MDA. ADO, по-видимому, не зависит от размеров фрагментов и, как сообщается, имеет аналогичную скорость в других методах одноклеточных. Возможными решениями являются использование различных условий лизиса или проведение нескольких циклов амплификации из разведенных продуктов MDA, поскольку сообщалось, что опосредованная ПЦР амплификация из культивируемых клеток дает более низкие показатели ADO.
«Предпочтительная амплификация» — это чрезмерная амплификация одного из аллелей по сравнению с другим. Большинство исследований MDA сообщали об этой проблеме. Смещение усиления в настоящее время наблюдается как случайное. Это может повлиять на анализ небольших участков геномной ДНК при идентификации аллелей коротких тандемных повторов (STR).
Эндогенное, независимое от матрицы взаимодействие праймер-праймер обусловлено случайным дизайном гексамерных праймеров. Одним из возможных решений является разработка ограниченно-рандомизированных гексануклеотидных праймеров, которые не дают перекрестной гибридизации.
С помощью МДА секвенированы одиночные клетки некультивируемых бактерий, архей и протистов, а также отдельные вирусные частицы и единичные споры грибов . [8] [9] [10] [11] [12] [13] [14] [15] [16] [17] [18]
Способность секвенировать отдельные клетки также полезна в борьбе с болезнями человека. Геномы из отдельных эмбриональных клеток человека были успешно амплифицированы для секвенирования с использованием MDA, что позволяет проводить преимплантационную генетическую диагностику (PGD): скрининг генетических проблем со здоровьем у эмбриона на ранней стадии перед имплантацией . [19] Заболевания с гетерогенными свойствами, такие как рак , также выигрывают от способности секвенирования генома на основе MDA изучать мутации в отдельных клетках.
Продукты MDA из одной клетки также успешно использовались в экспериментах по сравнительной геномной гибридизации , которые обычно требуют относительно большого количества амплифицированной ДНК.
Иммунопреципитация хроматина приводит к образованию сложных смесей относительно коротких фрагментов ДНК, которые трудно амплифицировать с помощью MDA, не вызывая систематической ошибки в представлении фрагментов. Был предложен способ обойти эту проблему, основанный на превращении этих смесей в кольцевые конкатемеры с помощью лигирования с последующим применением MDA, опосредованного ДНК-полимеразой Φ29. [20]
Следовое количество образцов, собранных с места преступления, может быть увеличено с помощью MDA до количества, достаточного для судебно-медицинского анализа ДНК, который обычно используется при идентификации жертв и подозреваемых.