Из Википедии, бесплатной энциклопедии
Перейти к навигации Перейти к поиску
Экстракт хлорофилла в спирте показан под белым светом (вверху) и УФ-светом, вызывающим флуоресценцию (внизу).
Микроскопические изображения листа мха Plagiomnium undulatum . Светлопольная микроскопия вверху и флуоресцентная микроскопия внизу. Красная флуоресценция от хлорофилла в хлоропластах.

Флуоресценция хлорофилла - это свет, повторно излучаемый молекулами хлорофилла во время возврата из возбужденного состояния в невозбужденное . Он используется как индикатор преобразования фотосинтетической энергии в растениях , водорослях и бактериях . Возбужденный хлорофилл рассеивает поглощенную световую энергию, стимулируя фотосинтез (фотохимическое преобразование энергии), в виде тепла при нефотохимическом тушении или путем испускания в виде флуоресцентного излучения. Поскольку эти процессы являются взаимодополняющими, анализ флуоресценции хлорофилла является важным инструментом в исследованиях растений с широким спектром применений. [1] [2]

Эффект Каутского [ править ]

При освещении адаптированного к темноте листа наблюдается быстрое увеличение флуоресценции фотосистемы II (ФСII), за которым следует медленное снижение. Это явление, впервые обнаруженное Каутским и др. В 1932 г. , называется эффектом Каутского. Этот переменный рост флуоресценции хлорофилла происходит из-за фотосистемы II. [3] Флуоресценция фотосистемы I не переменная, а постоянная. [3]

Увеличение флуоресценции происходит из-за того, что реакционные центры ФСII находятся в «закрытом» или химически восстановленном состоянии. [4] Реакционные центры «закрываются», когда не могут принимать дальнейшие электроны. Это происходит, когда акцепторы электроновпосле ФСII еще не передали свои электроны следующему электронному носителю, поэтому они не могут принять другой электрон. Закрытые реакционные центры снижают общую фотохимическую эффективность и, таким образом, повышают уровень флуоресценции. Перевод листа из темного состояния в светлый увеличивает долю закрытых реакционных центров ФСII, поэтому уровни флуоресценции увеличиваются в течение 1-2 секунд. Впоследствии флуоресценция уменьшается в течение нескольких минут. Это связано с; 1. большее «фотохимическое тушение», при котором электроны транспортируются от ФСII за счет ферментов, участвующих в фиксации углерода; и 2. большее «нефотохимическое тушение», при котором больше энергии преобразуется в тепло.

Измерение флуоресценции [ править ]

Обычно первоначальным измерением является минимальный уровень флуоресценции . Это флуоресценция в отсутствие фотосинтетического света. [5]

Чтобы использовать измерения флуоресценции хлорофилла для анализа фотосинтеза, исследователи должны различать фотохимическое тушение и нефотохимическое тушение (рассеивание тепла). Это достигается путем прекращения фотохимии, что позволяет исследователям измерять флуоресценцию только при наличии нефотохимического тушения. Чтобы снизить фотохимическое тушение до незначительного уровня, на лист направляют короткую вспышку света высокой интенсивности. Это временно закрывает все реакционные центры ФСII, что предотвращает передачу энергии ФСII нижележащим электронным носителям. Короткая вспышка не повлияет на нефотохимическое гашение. Во время вспышки флуоресценция достигает уровня, достигаемого в отсутствие какого-либо фотохимического гашения, известного как максимальная флуоресценция.. [5]

Эффективность фотохимического тушения (которая является показателем эффективности ФС II) может быть оценена путем сравнения стабильного выхода флуоресценции на свету и выхода флуоресценции в отсутствие фотосинтетического света . На эффективность нефотохимического тушения влияют различные внутренние и внешние факторы. Изменения в теплоотдаче означают изменения в . Рассеяние тепла невозможно полностью остановить, поэтому невозможно измерить выход флуоресценции хлорофилла в отсутствие нефотохимического тушения. Поэтому исследователи используют адаптированную к темноте точку ( ) для сравнения оценок нефотохимического тушения. [5]

Общие параметры флуоресценции [ править ]

: Минимальная флуоресценция (условные единицы). Уровень флуоресценции адаптированного к темноте образца, когда все реакционные центры фотосистемы II открыты.

: Максимальная флуоресценция (условные единицы). Уровень флуоресценции адаптированного к темноте образца при применении импульса высокой интенсивности. Все реакционные центры фотосистемы II закрыты.

: Минимальная флуоресценция (условные единицы). Уровень флуоресценции адаптированного к свету образца, когда все реакционные центры фотосистемы II открыты; оно понижается по сравнению с нефотохимическим тушением.

: Максимальная флуоресценция (условные единицы). Уровень флуоресценции адаптированного к свету образца при применении импульса высокой интенсивности. Все реакционные центры фотосистемы II закрыты.

: Стабильная конечная флуоресценция (произвольные единицы). Уровень стационарной флуоресценции снижался (= гасился) за счет фотохимических и нефотохимических процессов.

: Время половинного нарастания от до .

Расчетные параметры [ править ]

переменная флуоресценция. Рассчитывается как = - . [6]

- отношение переменной флуоресценции к максимальной флуоресценции. Рассчитывается как . [7] Это показатель максимальной эффективности ФСII (эффективности, если бы все центры ФСII были открыты). может быть использован для оценки потенциальной эффективности ФСII путем проведения измерений, адаптированных к темноте.

измеряет эффективность Фотосистемы II. Рассчитывается как = . [8] Этот параметр измеряет долю света, поглощенного ФСII, который используется в фотохимии. Таким образом, он может дать оценку скорости линейного переноса электронов и, таким образом, указывает на общий фотосинтез.

(фотохимическая закалка). Рассчитывается как . [9] Этот параметр приблизительно соответствует количеству открытых реакционных центров ФСII.

Пока дает оценку эффективности и сообщает нам, какие процессы повлияли на эффективность. Закрытие реакционных центров из-за высокой интенсивности света изменит значение . Изменения в эффективности нефотохимического тушения изменят соотношение .

Приложения теории [ править ]

Выход ФСII как мера фотосинтеза [ править ]

Флуоресценция хлорофилла, по-видимому, является мерой фотосинтеза, но это чрезмерное упрощение. Флуоресценция может измерять эффективность фотохимии PSII, которую можно использовать для оценки скорости линейного переноса электронов путем умножения на интенсивность света. Однако исследователи обычно имеют в виду фиксацию углерода, когда говорят о фотосинтезе. Электронный транспорт и фиксация CO 2 могут хорошо коррелировать, но могут не коррелировать в полевых условиях из-за таких процессов, как фотодыхание, метаболизм азота и реакция Мелера .

Связь транспорта электронов с фиксацией углерода [ править ]

Мощный метод исследования - одновременное измерение флуоресценции хлорофилла и газообмена для получения полной картины реакции растений на окружающую среду. Один из методов заключается в одновременном измерении фиксации CO 2 и фотохимии ФСII при разной интенсивности света в условиях, не связанных с фотодыханием. График фиксации CO 2 и фотохимии PSII показывает потребность в электронах на одну фиксированную молекулу CO 2 . По этой оценке можно оценить степень фотодыхания . Это было использовано для изучения значения фотодыхания как фотозащитного механизма во время засухи.

Флуоресцентный анализ также может применяться для понимания эффектов низких и высоких температур.

  • Sobrado (2008) [10] исследовал газообмен и реакцию флуоресценции хлорофилла А на свет высокой интенсивности у видов-первопроходцев и лесных видов. Полуденный газообмен листьев измеряли с помощью системы фотосинтеза , которая измеряла чистую скорость фотосинтеза, gs и межклеточную концентрацию CO 2 ( ). В тех же листьях, которые использовались для измерения газообмена, параметры флуоресценции хлорофилла а (начальная, максимальная, и переменная, ) измеряли с помощью флуорометра. Результаты показали, что, несмотря на то, что виды-первопроходцы и лесные виды, населяющие разные среды обитания, показали одинаковую уязвимость к полуденному фотоингибированию в листьях, подвергшихся воздействию солнца.

Измерение стресса и стрессоустойчивости [ править ]

Флуоресценция хлорофилла может измерять большинство типов стресса растений . Флуоресценция хлорофилла может использоваться как показатель стресса растений, поскольку стрессы окружающей среды, например, экстремальные температуры, свет и доступность воды, могут снизить способность растения к нормальному метаболизму. Это может означать дисбаланс между поглощением световой энергии хлорофиллом и использованием энергии в фотосинтезе. [11]

  • Favaretto et al. (2010) [12] исследовали адаптацию к сильному свету у пионерных и поздних сукцессионных видов, выращенных при 100% и 10% освещении. Многочисленные параметры, в том числе хлорофилла в флуоресценции, были измерены. Наблюдалось большее снижение яркости при полном солнечном свете у поздних сукцессионных видов, чем у видов-пионеров. В целом, их результаты показывают, что виды-первопроходцы лучше себя чувствуют при ярком солнечном свете, чем виды поздних сукцессий, предполагая, что растения-первопроходцы обладают большей потенциальной устойчивостью к фотоокислительному повреждению.
  • Неоклеус и Василакакис (2009) [6] исследовали реакцию малины на борный и солевой стресс. Флуорометр хлорофилла был использован для измерения , и . На флуоресценцию хлорофилла листьев концентрация NaCl существенно не влияла, когда концентрация B была низкой. Когда B был увеличен, флуоресценция хлорофилла листьев уменьшалась в условиях солевого раствора. Можно сделать вывод, что совместное действие B и NaCl на малину вызывает токсический эффект по фотохимическим параметрам.
  • Лу и Чжан (1999) изучали тепловой стресс у растений пшеницы и обнаружили, что температурная стабильность в фотосистеме II листьев, подверженных водному стрессу, положительно коррелирует с сопротивлением метаболизма во время фотосинтеза. [13]

Индекс баланса азота [ править ]

Пример портативного многопараметрического флуориметра, который использует соотношение между хлорофиллом и флавонолами для определения дефицита азота у растений.

Из-за связи между содержанием хлорофилла и содержанием азота в листьях флуорометры хлорофилла могут использоваться для обнаружения дефицита азота в растениях несколькими методами .

Основываясь на нескольких годах исследований и экспериментов, полифенолы могут быть индикаторами азотного статуса растения. Например, когда растение находится в оптимальных условиях, оно способствует своему первичному метаболизму и синтезирует белки (молекулы азота), содержащие хлорофилл, и небольшое количество флавонолов (вторичные соединения на основе углерода). С другой стороны, в случае нехватки азота мы будем наблюдать повышенное производство флавонолов растением. [14]

NBI (индекс баланса азота) от Force-A позволяет оценить азотные условия в культуре путем расчета соотношения между хлорофиллом и флавонолами (в зависимости от распределения азота / углерода).

Измерьте содержание хлорофилла [ править ]

Гительсон (1999) утверждает: «Было обнаружено, что соотношение между флуоресценцией хлорофилла при 735 нм и диапазоном длин волн от 700 до 710 нм, F735 / F700 линейно пропорционально содержанию хлорофилла (с коэффициентом детерминации r2 более 0,95) и, следовательно, это соотношение можно использовать как точный индикатор содержания хлорофилла в листьях растений ». [15]

Флуорометры хлорофилла [ править ]

Флуоресцентное изображение (значение Ft) адаксиальной поверхности листа

Развитие флуорометров позволило флуоресцентному анализу хлорофилла стать обычным методом исследования растений. Флуоресцентный анализ хлорофилла произвел революцию в связи с изобретением метода амплитудно-импульсной модуляции (PAM) [16] [17] и появлением первого коммерческого модулированного флуориметра хлорофилла PAM-101 (Walz, Германия). Путем модуляции измерительного светового луча (импульсы микросекундного диапазона) и параллельного обнаружения возбужденной флуоресценции можно определить относительный выход флуоресценции (Ft) в присутствии окружающего света. Что особенно важно, это означает, что флуоресценцию хлорофилла можно измерить в полевых условиях даже при ярком солнечном свете. [5]

Сегодня флуорометры хлорофилла предназначены для измерения множества различных механизмов растений. Протоколы измерений: F V / F M и OJIP измеряют эффективность образцов Photosystem II в обычном и известном состоянии адаптации к темноте. Эти протоколы полезны для измерения многих типов стресса растений. [18] адаптированный к свету протокол измерения Бернарда Генти ΔF / F M ', или Y (II), является эффективным и чувствительным способом измерения образцов растений в условиях окружающего или искусственного освещения. [19] Однако, поскольку значения Y (II) также меняются в зависимости от интенсивности света, следует сравнивать образцы при той же интенсивности света, если только световое напряжение не является фокусом измерения. Y (II) может быть более чувствительным к некоторым видам стресса растений, чем FV / F M , например, тепловой стресс. [20]

Также были разработаны другие протоколы измерения механизмов завода. Когда хлоропласт поглощает свет, часть световой энергии идет на фотохимию, часть идет на регулируемое рассеяние тепла, а часть идет на нерегулируемое рассеяние тепла. [21] Существуют различные параметры измерения флуоресценции хлорофилла для измерения всех этих событий. В модели озера q L измеряет фотохимическое тушение, Y (NYO) измеряет регулируемое рассеяние тепла растениями, а Y (NO) измеряет нерегулируемое рассеяние тепла. [21] Более старый протокол гашения, называемый моделью лужи, использует q P для фотохимического гашения, q Nдля нефотохимического тушения регулируемого и нерегулируемого теплоотвода и NPQ для оценки нефотохимического тушения. [22] NPQ также был возрожден в модели озера математически. [23]

Кроме того, параметры q E и pNPQ были разработаны для измерения фотозащитного цикла ксантофилла. [24] [25] q T - мера переходов между состояниями. [26] q M - это мера миграции хлоропластов, [27] и q I - мера фотоингибирования растений. [28]

При более низких уровнях актинического света NPQ = qE + qT + qI [24]

При высоких уровнях актиничного света NPQ = qE + qM = qI [27]

Некоторые флуорометры сконструированы так, чтобы их можно было переносить, и ими можно было пользоваться одной рукой.

Последовательное дальнейшее развитие флюорометров для визуализации облегчает визуализацию пространственной неоднородности фотосинтетической активности образцов. Эти неоднородности естественным образом возникают в листьях растений, например, во время роста, различных стрессов окружающей среды или заражения патогенами. Таким образом, знание неоднородностей образцов важно для правильной интерпретации фотосинтетических характеристик образца растений. Высокопроизводительные флуориметрические системы визуализации позволяют анализировать отдельные клетки / отдельные хлоропласты, а также участки образцов, покрывающие целые листья или растения.

Альтернативные подходы [ править ]

Датчики LIF [ править ]

Методы, основанные на эффекте Каутского, не исчерпывают всего разнообразия методов обнаружения и оценки, основанных на флуоресценции хлорофилла. В частности, последние достижения в области лазерно-индуцированной флуоресценции (LIF) также предоставляют возможность разработки достаточно компактных и эффективных датчиков для оценки фотофизиологического статуса и биомассы. Вместо измерения эволюции общего потока флуоресценции такие датчики регистрируют спектральную плотность этого потока, возбуждаемого мощными монохроматическими импульсами лазерного света с длительностью наносекунды. Не требуя 15-20-минутного периода адаптации к темноте (как в случае методов эффекта Каутского [29] ) и будучи способными возбуждать образец со значительного расстояния, датчики LIF могут обеспечить быструю и удаленную оценку.

  • Применение метода LIF для оценки стресса от засухи у пробкового дуба ( Quercus suber ) и морской сосны ( Pinus pinaster ) на основе отношения выбросов хлорофилла I 685 / I 740 описано в работе. [30] Недавно был использован метод определения LIF для изучения роли белка pPLAIIα в защите фотосинтетического метаболизма во время стресса засухи с использованием генетически модифицированных растений арабидопсиса. [31]
  • В 2011 году Vieira et al. применил компактный недорогой датчик LIF [32] (построенный на основе твердотельного лазера Nd: YAG с модуляцией добротности с удвоенной частотой и специально модифицированного коммерческого миниатюрного оптоволоконного спектрометра Ocean Optics USB4000) для изучения сообществ приливного микрофитобентоса. Эмиссия хлорофилла позволила исследователям адекватно оценить поверхностную биомассу и отследить миграционные ритмы эпипелических бентосных микроводорослей в илистых отложениях. [33]

См. Также [ править ]

  • Интегрированный флуориметр для газообмена и флуоресценции хлорофилла листьев
  • Нефотохимическое тушение
  • Солнечная флуоресценция
  • [1]

Усовершенствованный флуориметр хлорофилла с непрерывным возбуждением

Ссылки [ править ]

  1. ^ Лу, Конгмин; Чжан, Цзяньхуа (июль 1999 г.). «Влияние водного стресса на фотохимию Фотосистемы II и ее термостабильность в растениях пшеницы» (PDF) . Журнал экспериментальной ботаники . 50 (336): 1199–1206. DOI : 10.1093 / JXB / 50.336.1199 .
  2. ^ Lembrechts, JJ; Zinnert, JC; Mänd, P; Де Бок, HJ. «5.1 Флуоресценция хлорофилла» . Справочник ClimEx . Проверено 14 января 2020 .
  3. ^ а б Чжу, XG .; Говинджи, Бейкер Н.Р .; Орт, ДР; Лонг, СП (2005). «Кинетика индукции флуоресценции хлорофилла а в листьях, предсказанная на основе модели, описывающей каждый дискретный шаг энергии возбуждения и переноса электронов, связанный с Фотосистемой II». Planta . 223 (1): 114–133. DOI : 10.1007 / s00425-005-0064-4 . PMID 16411287 . 
  4. ^ Чжу, XG .; Говинджи; Baker, NR; de Sturler, E .; Орт, ДР; Лонг, СП (2005). «Кинетика индукции флуоресценции хлорофилла а в листьях, предсказанная на основе модели, описывающей каждый дискретный шаг энергии возбуждения и переноса электронов, связанный с Фотосистемой II» (PDF) . Planta . 223 (1): 114–133. DOI : 10.1007 / s00425-005-0064-4 . PMID 16411287 .  
  5. ^ a b c d «Флуоресценция хлорофилла - практическое руководство» . Jxb.oxfordjournals.org. 2000-04-01 . Проверено 28 марта 2011 .
  6. ^ a b «Влияние бора и солености на красную малину in vitro - Международный журнал науки о фруктах». Informaworld.com. 2008-12-03. Cite journal requires |journal= (help)
  7. ^ Kitajima M, Butler WL (1975). «Тушение флуоресценции хлорофилла и первичной фотохимии в хлоропластах дибромотимохиноном». Biochim Biophys Acta . 376 (1): 105–115. DOI : 10.1016 / 0005-2728 (75) 90209-1 . PMID 1125215 . 
  8. ^ Дженти B, Briantais JM, Baker NR (1989). «Связь между квантовым выходом фотосинтетического транспорта электронов и тушением флуоресценции хлорофилла». Biochim Biophys Acta . 990 : 87–92. DOI : 10.1016 / s0304-4165 (89) 80016-9 .
  9. ^ Schreiber U, Schliwa U, Bilger W (1986). «Непрерывная регистрация фотохимического и нефотохимического тушения флуоресценции хлорофилла с помощью модулирующего флуорометра нового типа». Photosynth Res . 10 (1-2): 51–62. DOI : 10.1007 / bf00024185 . PMID 24435276 . 
  10. ^ Sobrado (2008). «Характеристики листьев и суточные колебания флуоресценции хлорофилла в листьях« банановой »растительности региона Амазонки». Photosynthetica . 46 (2): 202–207. DOI : 10.1007 / s11099-008-0033-9 .
  11. ^ "Биология стресса растений" . Personalpages.manchester.ac.uk . Проверено 28 марта 2011 .
  12. ^ Фаваретто; и другие. (2011). «Дифференциальные ответы антиоксидантных ферментов у первых и поздних сукцессионных видов тропических деревьев, выращенных на солнце и в тени». Экологическая и экспериментальная ботаника . 70 : 20–28. DOI : 10.1016 / j.envexpbot.2010.06.003 .
  13. ^ Лу, Конгмин; Чжан, Цзяньхуа (1999). «Влияние водного стресса на фотохимию Фотосистемы II и ее термостабильность в растениях пшеницы» . Журнал экспериментальной ботаники . 50 (336): 1199–1206. DOI : 10.1093 / jexbot / 50.336.1199 .
  14. ^ А. Картелат; З. Г. Черович; Ю. Гулас; С. Мейер; К. Леларж; Ж.-Л. Приул; А. Барботтин; М.-Х. Джеффрой; П. Гейт; Г. Агати; И. Моя (2005). «Оптически определенное содержание полифенолов листьев и хлорофилла как индикаторов дефицита азота в пшенице (Triticum aestivum L.)». Исследования полевых культур . 91 : 35–49. DOI : 10.1016 / j.fcr.2004.05.002 .
  15. ^ Гительсон, Анатолий А; Бушманн, Клаус; Лихтенталер, Хартмут К. (1999). «Коэффициент флуоресценции хлорофилла F735 / F700 как точный показатель содержания хлорофилла в растениях». Дистанционное зондирование окружающей среды . 69 (3): 296–302. Bibcode : 1999RSEnv..69..296G . DOI : 10.1016 / S0034-4257 (99) 00023-1 .
  16. ^ Schreiber U, W Bilger, Schliwa U (1986). «Непрерывная регистрация фотохимического и нефотохимического тушения флуоресценции хлорофилла с помощью модулирующего флуорометра нового типа». Фотосинт. Res . 10 (1-2): 51–62. DOI : 10.1007 / bf00024185 . PMID 24435276 . 
  17. ^ Шрайбер, Ульрих (1986). «Обнаружение быстрой индукционной кинетики с помощью нового типа высокочастотного модулированного флуорометра хлорофилла» . Фотосинт. Res . 9 (1–2): 261–272. DOI : 10.1007 / bf00029749 . PMID 24442302 . 
  18. ^ Бейкер, Нил Р .; Оксборо, Кевин (2004). «Флуоресценция хлорофилла как проба фотосинтетической продуктивности». Флуоресценция хлорофилла а . Достижения в фотосинтезе и дыхании. 19 . С. 65–82. DOI : 10.1007 / 978-1-4020-3218-9_3 . ISBN 978-1-4020-3217-2.
  19. ^ Дженти, Бернард; Бриантэ, Жан-Мари; Бейкер, Нил Р. (1989). «Связь между квантовым выходом фотосинтетического транспорта электронов и тушением флуоресценции хлорофилла». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Общие предметы . 990 : 87–92. DOI : 10.1016 / S0304-4165 (89) 80016-9 .
  20. ^ Haldimann, P .; Феллер, У. (2004). «Подавление фотосинтеза высокой температурой в листьях дуба (Quercus pubescens L.), выращенных в естественных условиях, тесно коррелирует с обратимым термозависимым снижением состояния активации рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилазы / оксигеназы» . Растение, клетка и окружающая среда . 27 (9): 1169–1183. DOI : 10.1111 / j.1365-3040.2004.01222.x .
  21. ^ a b Kramer, DM; Johnson, G .; Кииратс, О .; Эдвардс, Г. (2004). «Новые параметры флуоресценции для определения окислительно-восстановительного состояния КА и потоков энергии возбуждения». Фотосинтез Исследования . 79 (2): 209–218. DOI : 10.1023 / B: pres.0000015391.99477.0d . PMID 16228395 . 
  22. ^ ван Кутен, О; Снел, Дж (1990). «Использование номенклатуры флуоресценции хлорофилла в физиологии стресса растений». Photosynth Res . 25 (3): 147–150. DOI : 10.1007 / bf00033156 . PMID 24420345 . 
  23. ^ Клугаммер К. и Шрайбер У. (2008) Заметки по применению PAM 2008 1:27 -35
  24. ^ a b Muller, P .; Xiao-Ping, L .; Нийоги, К. (2001). «Нефотохимическое тушение. Ответ на избыток световой энергии» . Физиология растений . 125 (4): 1558–1566. DOI : 10.1104 / pp.125.4.1558 . PMC 1539381 . PMID 11299337 .  
  25. ^ Рубан, Александр В .; Мурчи, Эрик Х. (2012). «Оценка фотозащитной эффективности нефотохимического тушения флуоресценции хлорофилла: новый подход» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Биоэнергетика . 1817 (7): 977–982. DOI : 10.1016 / j.bbabio.2012.03.026 . PMID 22503831 . 
  26. ^ Рубан, А.В.; Джонсон, член парламента (2009). «Динамика поперечного сечения фотосистемы высших растений, связанная с переходами между состояниями». Фотосинтез Исследования . 99 (3): 173–183. DOI : 10.1007 / s11120-008-9387-х . PMID 19037743 . 
  27. ^ a b Cazzaniga, S; Осто, ЛД; Kong, SG .; Wada, M .; Басси, Р. (2013). «Взаимодействие между предотвращением поглощения фотонов, диссипацией избыточной энергии и синтезом зеаксантина против фотоокислительного стресса у Arabidopsis» . Заводской журнал . 76 (4): 568–579. DOI : 10.1111 / tpj.12314 . PMID 24033721 . 
  28. ^ Lichtenthaler, Hartmut K .; Бабани, Фатбардха (2004). «Адаптация к свету и старение фотосинтетического аппарата. Изменение состава пигментов, параметров флуоресценции хлорофилла и фотосинтетической активности». Флуоресценция хлорофилла а . Достижения в фотосинтезе и дыхании. 19 . С. 713–736. DOI : 10.1007 / 978-1-4020-3218-9_28 . ISBN 978-1-4020-3217-2.
  29. ^ Handy PEA: Анализатор эффективности установки непрерывного возбуждения (PDF) . Норфолк: Hansatech Instruments. 2012. с. 2. Архивировано из оригинального (PDF) 07.04.2016 . Проверено 23 мая 2014 .
  30. ^ Лавров; и другие. (2012). «Оценка водного стресса листьев пробкового дуба и хвои морской сосны на основе спектров LIF». Оптика и спектроскопия . 112 (2): 271–279. Bibcode : 2012OptSp.112..271L . DOI : 10.1134 / S0030400X12020166 .
  31. ^ Сильвестр и др. Вклад pPLAIIα в засухоустойчивость с использованием генетически модифицированных растений арабидопсиса: II. Влияние на фотосинтетический метаболизм. Int. Встреча с прог. Симпозиум по растениям SEB: Окислительный стресс и гибель клеток у растений: механизмы и последствия , Флоренция, Италия, 26–28 июня 2013 г., с. 5
  32. ^ Уткин; и другие. (2013). «Компактный недорогой детектор для оценки микрофитобентоса in vivo с использованием лазерно-индуцированной флуоресценции». Оптика и спектроскопия . 114 (3): 471–477. Bibcode : 2013OptSp.114..471U . DOI : 10.1134 / S0030400X13030259 .
  33. ^ Виейра; и другие. (2011). «Влияние литоральной миграции микрофитобентоса на определение биомассы с помощью лазерно-индуцированной флуоресценции» . Серия «Прогресс морской экологии» . 432 : 45–52. DOI : 10,3354 / meps09157 .

Внешние ссылки [ править ]

  • Лазар (1999). «Индукция флуоресценции хлорофилла А» . Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Биоэнергетика . 1412 (1): 1–28. DOI : 10.1016 / s0005-2728 (99) 00047-X . PMID  10354490 .
  • Лазар (2006). «Повышение флуоресценции полифазного хлорофилла А измеряется при высокой интенсивности возбуждающего света» . Функциональная биология растений . 33 : 9–30. DOI : 10.1071 / fp05095 .
  • Лазар (2015). «Параметры разделения фотосинтетической энергии» . Журнал физиологии растений . 175 : 131–147. DOI : 10.1016 / j.jplph.2014.10.021 . PMID  25569797 .
  • Каладжи; и другие. (2012). «Экспериментальные измерения светового излучения растений in vivo: перспектива, посвященная Дэвиду Уокеру». Фотосинтез Исследования . 114 (2): 69–96. DOI : 10.1007 / s11120-012-9780-3 . PMID  23065335 .
  • Максвелл, К .; Джонсон, GN (2000). «Флуоресценция хлорофилла - практическое руководство» . Журнал экспериментальной ботаники . 51 (345): 659–68. DOI : 10.1093 / jexbot / 51.345.659 . PMID  10938857 .
  • Мурчи и Лоусон (2013). «Флуоресцентный анализ хлорофилла: руководство по передовой практике и пониманию некоторых новых приложений» . Журнал экспериментальной ботаники . 64 (13): 3983–3998. DOI : 10.1093 / JXB / ert208 . PMID  23913954 .